Der NEUE Katalog ist da! - PRO PUBLIC GmbH
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Serum-free Systems<br />
Preparation of PowerStem HE1 medium:<br />
PowerStem HE1 basal medium requires supplementation<br />
with PowerStem HE1 growth supplement.<br />
Thaw PowerStem HE1 growth supplement before use. The<br />
thawed material should be used immediately or aliquoted<br />
and stored at -20° C. To obtain 500 ml PowerStem HE1<br />
complete medium please add 80 ml of thawed PowerStem<br />
HE1 growth supplement to 420 ml of PowerStem HE1<br />
basal medium. PowerStem HE1 complete medium (basal<br />
medium with growth supplement) is stable for 1 month<br />
when stored in the <strong>da</strong>rk at +2° C to +8° C.<br />
Instructions for use:<br />
• Prepare Fibronectin-coated plates by covering them<br />
with a Fibronectin stock solution (0.5 mg/10 ml of sterile<br />
water) for at least 30 min in the incubator.<br />
Recommended final concentration of Fibronectin:<br />
50 μg/10 cm 2 . If desired, Matrigel matrix can replace<br />
Fibronectin. The recommended dilution is 1:40. The<br />
matrix should be prepared according to the manufacturer’s<br />
instructions.<br />
• The starter culture must be a high quality culture and<br />
there must be a high density of undifferentiated cells.<br />
• The time of subculture is critical. Do not passage the<br />
cells too early, they will plate poorly and differentiate.<br />
The cultures need to grow to near-confluence.<br />
• Individual colonies should not touch each other.<br />
• Too dense growth promotes the differentiation of cells<br />
and thus the loss of pluripotency.<br />
• Use Collagenase for passaging the cells.<br />
• Warm appropriate amount of Collagenase IV solution<br />
(10 mg/ml), wash medium (DPBS) and complete<br />
medium to 37 °C in a water bath.<br />
• Aspirate the medium and add 1 to 2 ml collagenase<br />
to cover the cells.<br />
• Leave for 3 minutes to dislodge cell colonies from<br />
substrate. Do not expose longer than 3 minutes. This<br />
will cause poor plating and may induce differentiation.<br />
• Add 3 ml of culture medium and gently collect cells<br />
with a 5 ml pipette.<br />
• Collect cell suspension and put into conical tube and<br />
centrifuge for 5 min at 300x g at room temperature.<br />
• Re-suspend cells in PowerStem HE1 and plate directly<br />
on fibronectin-covered plate.<br />
• Cells should be split at a recommended ratio of 1:2<br />
every 4-5 <strong>da</strong>ys. The cultures should be fed every <strong>da</strong>y.<br />
hES-cells in PowerStem HE1<br />
hES-Zellen in PowerStem HE1<br />
BIOTECH <strong>GmbH</strong><br />
<br />
1.54<br />
Serum-freie Systeme<br />
PowerStem HE1/PowerStem HE1<br />
hES-cells colony in PowerStem HE1<br />
hES-Zellen Kolonie in PowerStem HE1<br />
Zubereitung von PowerStem HE1 Medium:<br />
Das PowerStem HE1 Basal Medium muss mit dem PowerStem<br />
HE1 Growth Supplement ergänzt werden. Tauen Sie <strong>da</strong>s Power-<br />
Stem HE1 Growth Supplement vor Gebrauch auf. Das aufgetaute<br />
Material sollte entweder sofort aufgebraucht oder aliquotiert<br />
und bei -20 °C gelagert werden. Um 500 ml PowerStem<br />
HE1 Komplettmedium zu erhalten, geben Sie bitte 80 ml<br />
PowerStem HE1 Growth Supplement zu 420 ml PowerStem<br />
HE1 Basal Medium. Das PowerStem HE1 Komplettmedium<br />
(Basalmedium mit Supplement) <strong>ist</strong> bei richtiger Lagerung im<br />
Dunkeln bei +2 °C bis +8 °C einen Monat haltbar.<br />
Gebrauchsanweisung:<br />
• Bereiten Sie mit Fibronectin beschichtete Platten vor, indem<br />
Sie diese mindestens 30 Minuten im Brutschrank mit einer<br />
Fibronectinlösung (0,5mg/10 ml) bedecken. Empfohlene<br />
endgültige Konzentration von Fibronectin: 50μg/10cm2.<br />
Falls gewünscht, kann Matrigel-Matrix <strong>da</strong>s Fibronection<br />
ersetzen. Die empfohlene Verdünnung <strong>ist</strong> 1:40. Die Matrix<br />
sollte nach Anweisungen des Herstellers vorbereitet werden.<br />
• Die Anfangs-Kultur muss von hoher Qualität sein und muss<br />
eine hohe Dichte an undifferenzierten Zellen aufweisen.<br />
• <strong>Der</strong> Zeitpunkt der Subkultur <strong>ist</strong> kritisch. Passagieren Sie<br />
die Zellen nicht zu früh, <strong>da</strong> diese sonst schlecht anwachsen<br />
und sich differenzieren. Die Kulturen sollen bis fast zur<br />
Konfluenz wachsen.<br />
• Einzelne Kolonien sollten einander nicht berühren. Zu<br />
dichtes Wachstum fördert die Differenzierung der Zellen<br />
und kann zu Verlust der Pluripotenz führen .<br />
• Für <strong>da</strong>s Passagieren der Zellen verwenden Sie bitte<br />
Collagenase.<br />
• Erwärmen Sie die entsprechende Menge Collagenase IV<br />
Lösung (10 mg/ml), <strong>da</strong>s Waschmedium (DPBS) und <strong>da</strong>s<br />
Komplettmedium in einem Wasserbad bei 37° C.<br />
• Saugen Sie <strong>da</strong>s Medium ab und überdecken Sie die Zellen<br />
mit 1 bis 2 ml Collagenase.<br />
• Nach 3 Minuten sollten sich die Zellkolonien vom Substrat<br />
lösen. Warten Sie allerdings nicht länger als 3 Minuten, <strong>da</strong><br />
sonst die Zellen schlecht anwachsen und möglicherweise<br />
eine Differenzierung ausgelöst wird.<br />
• Geben Sie 3 ml Kulturmedium <strong>da</strong>zu, sammeln Sie die<br />
Zellen vorsichtig mit einer 5-ml-Pipette und geben Sie die<br />
Zellsuspension in ein Zentrifugenröhrchen.<br />
• Zentrifugieren Sie 5 min. mit 300x g bei Raumtemperatur.<br />
• Resuspendieren Sie die Zellen in PowerStem HE1 und verteilen<br />
Sie diese direkt auf mit Fibronectin beschichtete Platten.<br />
• Die Zellen sollten alle 4 bis 5 Tage im Verhältnis von 1:2<br />
gesplittet werden. Täglicher Medienwechsel.<br />
hES-cells in medium with 10 % FBS<br />
hES-Zellen in Medium mit 10 % FBS<br />
PowerStem HE1 100 ml Kit P04-7711K<br />
500 ml Kit P04-77110K<br />
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