N 33 V 72 Final
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TENORIO-SALGADO, S.; DOMÍNGUEZ-GARCÍA, D. Y LIZAMA-UC, G.<br />
Material biológico<br />
MATERIAL Y MÉTODOS<br />
Los gránulos del consorcio microbiano empleados en este<br />
estudio fueron recolectados en el municipio de Escárcega, los<br />
cuales fueron almacenados en glicerol al 60% en el ultra<br />
congelador hasta su uso.<br />
Medio de cultivo para el aislamiento de bacterias<br />
El aislamiento de bacterias que conforman el consorcio<br />
microbiano se realizó mediante la disgregación de los<br />
gránulos con el gentleMACS Dissociator, posteriormente se<br />
hicieron diluciones seriales y se plaqueó en medio de cultivo<br />
MRS por 48 horas para obtener colonias aisladas.<br />
Ensayos de antagonismo<br />
Discos micelios de ocho milímetros incubados durante de<br />
seis días, fueron colocados en el centro de las placas de Petri,<br />
1 μl de cultivo liquido bacteriano es inoculado en uno de los<br />
cuadrantes de la placa Petri (cuatro bacterias por placa, una<br />
en cada cuadrante), y las placas se incubaron a 28 ° C por seis<br />
días. A partir de entonces, las zonas de inhibición (en mm) se<br />
determinaron midiendo la distancia entre los bordes del<br />
micelio fúngico y la cepa bacteriana. Todas las cepas fueron<br />
evaluadas en dos réplicas independientes. El efecto<br />
antagonista bacteriano contra los hongos se calculó en<br />
función de la inhibición radial porcentajes, de acuerdo con la<br />
siguiente ecuación:<br />
Los productos fueron fraccionados mediante electroforesis<br />
en geles de agarosa al 2% y teñidos con bromuro de etidio 10<br />
mg.mL -1 .<br />
Tabla 1. Secuencia de cebadores usadas en la amplificación por PCR<br />
Cebador Secuencia (5´- 3´) T.A Ref.<br />
Oligo48<br />
Oligo 105<br />
EntF<br />
EntR<br />
plnF<br />
plnR<br />
TAYGGIAAYGGIGTITAYTG<br />
CYTCDATNGCRTTRTC<br />
GGGTACCACTCATAGTGGAA<br />
CCAGCAGTTCTTCCAATTTCA<br />
GGCATAGTTAAAATTCCCCCC<br />
CAGGTTGCCGCAAAAAAAG<br />
3 Kb 1<br />
412 pb 2<br />
428 pb 3<br />
T.A. =Tamaño del amplicón. Ref. = Referencias 1) Losteinkit et al. (2001),<br />
2) Suwanjinda et al. (2007), 3) Rojo-Bezares et al. (2007)<br />
RESULTADOS Y DISCUSIÓN<br />
Los plásmidos son moléculas de ADN que se auto replican y<br />
no están asociados al cromosoma o ADN nuclear, estos no<br />
son material genético para la supervivencia de la bacteria, sin<br />
embargo, pueden acarrear genes de interés. Un gran número<br />
de plásmidos han sido aislados y caracterizados a partir de<br />
bacterias acido lácticas como material genético<br />
extracromosomal (Gasson 1990). En el presente trabajo se<br />
aislaron 14 bacterias de un consorcio microbiano tipo kéfir<br />
proveniente de Escárcega Campeche, a las cuales se les<br />
realizó ensayos de antagonismo sobre hongos fitopatógenos<br />
(figura 1).<br />
% radial de inhibición= ( Rc−Ri<br />
Rc ) 100<br />
donde Rc es el radio del hongo control que se encontrara en<br />
ausencia de la bacteria y Ri representa el radio del hongo en<br />
presencia de la bacteria antagonista (Ezziyyani et al. 2004)<br />
Aislamiento de plásmidos<br />
Cultivo fresco de bacterias aisladas y crecidas en medio MRS<br />
por 24 horas a 37ºC y 250 rpm, fueron empleadas para el<br />
aislamiento de los plásmidos siguiendo el protocolo<br />
establecido de GeneJET Plasmid Miniprep Kit de la casa<br />
comercial Thermo Fisher. Los productos del aislamiento<br />
fueron corroborados en geles de agarosa al 2% y teñidos con<br />
bromuro de etidio 10 mg.mL -1<br />
Detección de bacteriocinas por PCR<br />
Para la detección de bacteriocinas se emplearon tres juegos<br />
de cebadores los cuales se presentan en la tabla 1, las<br />
condiciones de la PCR fueron: 94ºC por 5 min, 30 ciclos de<br />
94ºC por 1 min, 51ºC por 40 s, <strong>72</strong>ºC por 3 min y una<br />
extensión final a <strong>72</strong>ºC por 10 min.<br />
Figura. 1. Efecto Antagonista de las bacterias frente hongos fitopatógenos<br />
Los análisis de antagonismo demostraron que estas cepas<br />
presentan actividad antagónica entre el 50 y 90%<br />
dependiendo del tipo de microorganismo sobre el cual<br />
actúan. A fin de detectar si estas cepas contenían ADN<br />
extracromosomal, se realizó una extracción plasmídica. En la<br />
figura 2 se presenta el ADN plasmídico proveniente de estas<br />
cepas, de las 12 cepas analizadas, las cepas 1,8,12 no<br />
REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO MÉRIDA Vol. <strong>33</strong> NÚM. <strong>72</strong> 127