Mares temporaires

Suivi des populations
Le suivi de la fréquence, de l’abondance, de la densité des populations
par litre ou par unité de surface (m 2 ) et du sex-ratio* est plus
lourd en temps et demande plus de rigueur. Dans ce cas la mare
est divisée en cellules numérotées dont certaines (au moins 3) sont
tirées au hasard pour un prélèvement de volume connu (technique
des carrés latins). Moyenne et variance permettent d’établir la distribution
de l’espèce au temps t. Par exemple, ce protocole appliqué
à Lindiriella massaliensis dans la mare de Bonne Cougne (Var,
France) a montré des regroupements d’individus en décembre, puis
une distribution au hasard en janvier, avant la disparition spontanée
de la population en février. A faible profondeur, les échantillons
sont prélevés au cylindre sans fond 275 375, 380 . Son enfoncement de
quelques centimètres dans les sédiments assure l’étanchéité à sa
base ce qui permet de vider ou de filtrer la colonne d’eau dont on
connaît le volume (surface de base x hauteur). Lorsque la profondeur
dépasse 50-60 cm, on utilise un filet qui filtrera un volume
d’eau déterminé par le diamètre d’ouverture et la longueur du trait
(1 ou 2 m en général). L’emploi de substrats artificiels peut compléter
les méthodes classiques (Encadré 56). Le dénombrement se
fera sous loupe binoculaire et les comptages se feront soit à valeurs
réelles (juvéniles, adultes), soit dans le cas de grands effectifs,
selon la méthode de Frontier 151 qui définit des classes d’abondance
selon une progression géométrique :
• Cote 0 effectifs 0,
• Cote 1 effectifs 1 à 3,
• Cote 2 effectifs 4 à 17,
• Cote 3 effectifs 18 à 80,
• Cote 4 effectifs 80 à 350,
• Cote 5 effectifs 351 à 1 500, etc.
La détermination du sex-ratio* est utile dans le suivi des populations,
l’évolution du ratio pouvant varier selon les espèces et en
fonction du temps. Les techniques basées sur le suivi individuel sont
inopérantes chez les crustacés : la mue ne permet pas le marquage
coloré et la coupure d’un cerque, ou une amputation, comme cela
peut se faire chez les amphibiens, provoque la mort rapide des individus
suite à des hémorragies (système circulatoire ouvert).
L’étude des populations de macro-crustacés peut faire appel à
d’autres méthodes mais qui sont relativement lourdes à mettre en
Figure 44. Restes de macro-crustacés trouvés dans le sédiment (d’après Thiéry 380 )
A, B : Anostracés, antennes de Branchipus schaefferi et Tanymastigites jbiletica
C, D, E : Fragments de cerque de bouclier céphalo-thoraxique, mandibule de Triops granarius
F : Conchostracé, fragment de pince de Leptestheria mayeti
A
F
6. Suivi
œuvre et qui peuvent demander un équipement rarement à disposition
des gestionnaires et des compétences techniques très
pointues. Lorsqu’elles seront nécessaires, ces méthodes (décrites
sommairement ci-dessous) seront mises en œuvre par des équipes
spécialisées.
Les courbes de croissance/tables de vie nécessitent l’établissement
de corrélations entre la longueur totale ou d’un élément, comme
le telson, et l’âge des individus. D’une façon générale, les Anostracés
sont mesurés du front à l’extrémité des cerques inclus, les
Notostracés par la longueur de la carapace et les Spinicaudata par
la longueur des valves. Les mesures sont faites sur papier millimétré
(estimations rapides) ou avec un micromètre oculaire sous
loupe binoculaire.
La fécondité se mesure par le nombre d’œufs de chaque ponte
durant la vie de la femelle. A titre d’exemple, le nombre d’œufs
croît de façon exponentielle, de 2 à 350 au sein d’une ponte avec
l’âge de la femelle (8 à 17 mm). Sachant qu’elle peut pondre entre
4 et 6 fois au cours de son existence, on peut estimer le nombre
d’œufs produits à plus de 650. Dans le cas de Spinicaudata (Cyzicus,
Leptestheria, etc.), une femelle peut au cours de sa vie pondre plusieurs
milliers d’œufs.
Les mesures de biomasses nécessitent une fixation au formaldéhyde
10 % (ne déforme pas et ne dissout pas ou peu les graisses : 6 à 8 %
de perte de biomasse contre 25 % dans l’alcool), le séchage à l’étuve
(65 °C), le refroidissement, puis la pesée des individus 380 (isolément
ou par lots de 10). L’établissement d’une équation de régression
Longueur (L mm)-Poids sec (W mg) spécifique servira pour d’autres
milieux sans avoir à recommencer ces opérations.
Dans le cadre d’études des métapopulations*, les méthodes utilisant
l’outil moléculaire (structure génétique des populations, polymorphisme
des loci, microsatellites, etc.) permettent de caractériser les
populations (stabilité intrasite) et de quantifier leur isolement, ou
leurs relations interpopulationnelles au sein d’un ensemble de sites
correspondant à une aire fragmentée (voir Bohonak 39 et Brendonck
et al. 57 , pour des exemples chez les Anostracés).
E
C
D
B
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