Mares temporaires

Les mares temporaires méditerranéennes
d. Suivi des amphibiens
Jakob C.
Généralités
Un cycle de vie qui conditionne les possibilités de suivis
Les méthodes utilisées pour le suivi des amphibiens portent pour
l’essentiel sur la phase aquatique, lorsque les animaux sont concentrés
dans les mares et, pour plusieurs d’entre elles, sur l’échantillonnage
de nuit. Dans la grande majorité des cas, il faut donc
synchroniser les visites avec les périodes de reproduction, ellesmêmes
souvent liées aux périodes de pluie. L’échantillonnage des
adultes est donc contraignant par rapport à l’échantillonnage
des larves, qui peut se pratiquer de jour comme de nuit et sur des
périodes bien plus longues.
Reproduction
A l’instar d’autres groupes d’animaux des mares temporaires, la
reproduction des amphibiens montre de fortes variations d’une
année à l’autre (Encadré 21, Chapitre 3d). Il est donc difficile de
différencier les fluctuations de populations à long terme des variations
observées sur le court terme. Certaines espèces se caractérisent
par une flexibilité importante leur permettant de s’adapter aux
variations interannuelles des précipitations alors que d’autres sont
plus stables (Encadré 22, Chapitre 3d). Pour le suivi des amphibiens
plusieurs paramètres seront importants : le choix de la période des
échantillonnages, la nécessité de visites répétées durant les périodes
favorables, l’intérêt de poursuivre le suivi sur plusieurs années
consécutives et la corrélation des échantillonnages avec les données
d’une station météorologique locale et les données physiques
du milieu, pour en faire une interprétation correcte.
Réglementation et protection
Les amphibiens sont soumis à réglementation dans la plupart des
pays européens. Sur le territoire français, toutes les espèces sont
protégées par la loi (arrêté du 24 avril, J.O. du 12 mai 1979) excepté
Rana esculenta et Rana temporaria qui font l’objet d’une réglementation
particulière. Pour tout projet de suivi impliquant une
manipulation des amphibiens, il faut donc, au préalable, demander
les autorisations. Celles-ci sont délivrées par les préfectures des
départements, en France, et par les Comunidades Autónomas, en
Espagne.
Au-delà de ces démarches administratives, il convient d’être prudent
lors de la manipulation des animaux, adultes ou larves. Ils
possèdent, en effet, une peau fragile, notamment les espèces couvertes
de mucus. Il est donc recommandé de les garder en main un
minimum de temps.
Quelques conseils :
•Variabilité dans le temps : de fortes variations interannuelles dans
la reproduction peuvent apparaître (Fig. 42), il est donc conseillé,
pour tout inventaire complet, de mener les prospections sur au
moins trois ans.
• Les méthodes présentées sont adaptées à la petite surface des
mares temporaires.
• La combinaison de plusieurs techniques sur le terrain est très
souhaitable.
• Les techniques présentées tiennent compte de l’expérience
acquise sur les mares temporaires du Midi de la France, il existe
bien sûr d’autres méthodes, non abordées ici 121, 187 .
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Encadré 55. Explorer un nouveau site
Dans un site inconnu (par exemple un plateau, un massif avec
un nombre de mares inconnu), on commencera par un repérage
nocturne après de fortes précipitations et avec une température
de l’air plutôt élevée (pas en-dessous de 13 °C), en automne
(octobre-novembre) ou au printemps (février à avril, pour les
périodes propices pour la reproduction, voir Fig. 42). La localisation
des lieux (mares) occupés se fera alors à l’ouïe, grâce aux
vocalisations de certaines espèces (grenouilles, rainettes essentiellement).
Après cette phase de localisation, les méthodes d’inventaire
habituelles pourront être appliquées.
Jakob C.
Méthodes
Le choix des méthodes dépendra essentiellement de l’objectif recherché
mais devra prendre en compte leurs exigences techniques et
leur coût. Les résultats qui pourront être obtenus sont essentiellement
l’inventaire, l’évaluation de la taille d’une population ou le
suivi démographique.
Inventaire
Il consiste à dresser une simple liste des espèces présentes sur un
site donné. En fonction du temps passé et de la méthode utilisée, cette
liste d’espèces peut varier considérablement. Il faut donc choisir la
période la plus propice à l’observation des amphibiens (Fig. 42) et
éventuellement effectuer quelques observations de vérification en
dehors de cette période. Dans le Midi de la France, les périodes les
plus appropriées sont octobre-novembre pour la période automnale
et février à avril pour la période printanière.
Plusieurs méthodes existent :
• La détection visuelle des adultes se fera de préférence de nuit, à
l’aide d’une torche, à proximité des sites potentiels de reproduction.
Ce protocole est facile à mettre en œuvre. Il nécessite un équipement
minimal et permet des comparaisons entre sites lorsque l’effort
d’observation est standardisé (nombre d’heures-personnes). La
seule contrainte de cette méthode est une bonne capacité d’identification
des espèces. Sous certaines conditions, les prospections de
jour peuvent également donner de bons résultats, principalement au
moment de la sortie des individus récemment métamorphosés (maijuin
surtout dans le Midi de la France). Il s’agit, dans ce cas, de
rechercher les animaux à proximité immédiate de la mare, sous les
pierres ou les objets situés à peu de distance de celle-ci.
• Le comptage auditif (de nuit) consiste en des sorties de nuit pour
identifier les espèces présentes par leur chant caractéristique. Le
protocole est simple, l’équipement minimal et l’effort d’observation
(nombre d’heures/personnes) peut être standardisé entre sites. En
revanche, cette méthode est limitée aux amphibiens chanteurs (certains
anoures uniquement) et son application dépend des conditions
météorologiques (pluie, pas de vent, température élevée pour certaines
espèces, comme le Pélobate cultripède). Pour les grands sites,
elle s’avère plus difficile à mettre en œuvre à cause de la portée
limitée du chant. Dans ce cas, elle peut être combinée avec des transects
(cf. Chapitre 6d). Une bonne connaissance des chants d’anoures
est nécessaire, sauf si des enregistrements sont effectués et soumis
à des spécialistes.
•L’échantillonnage des larves se fait à l’aide d’une épuisette à mailles
assez grosses (2 à 3 mm) plongée de façon régulière à différentes