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Studio dell'aggregazione cellulare in ceppi vinari di Saccharomyces ...

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successivamente con 2 ml <strong>di</strong> sorbitolo 1M a 4 °C. Il pellet è stato<br />

risospeso <strong>in</strong> 1 ml <strong>di</strong> DTT 25 mM (<strong>di</strong>tiotreitolo) e tenuto a temperatura<br />

ambiente per 10 m<strong>in</strong>uti. Le cellule sono state centrifugate per elim<strong>in</strong>are il<br />

DTT, lavate con 2 ml <strong>di</strong> sorbitolo 1M e risospese <strong>in</strong> 250 µl <strong>di</strong> sorbitolo 1M.<br />

C<strong>in</strong>quanta µl <strong>di</strong> sospensione <strong>cellulare</strong> sono stati mixati con 5 µl <strong>di</strong> DNA e<br />

trasferiti <strong>in</strong> cuvetta (0,2 cm Biorad, Milano) per l’elettroporazione<br />

(parametri: 1,5kV, 200Ω, 25 µFaradays, pulse time Ǻ5 millisec) con il<br />

“Gene Pulser II System” (Biorad, Milano). Le cellule sono state <strong>di</strong>luite con<br />

200 µl <strong>di</strong> sorbitolo 1M per <strong>in</strong>crementare il volume e imme<strong>di</strong>atamente<br />

sem<strong>in</strong>ate per span<strong>di</strong>mento su terreno selettivo costituito da SC-URA <strong>in</strong><br />

<strong>di</strong>verse aliquote per ogni piastra. I trasformanti sono stati strisciati su<br />

nuove piastre <strong>di</strong> terreno SC-URA. Le precolture per l’estrazione <strong>di</strong> DNA<br />

plasmi<strong>di</strong>co, sono state preparate su 10 ml <strong>di</strong> terreno SC–URA liquido<br />

secondo il protocollo già riportato. La presenza del plasmide con l’<strong>in</strong>serto<br />

clonato è stata confermata per PCR impiegando i primer GAL1 Forward:<br />

5’-AATATACCTCTATACTTTAACGTC- 3’ e V5 C-term Reverse: 5’ –<br />

ACCGAGGAGAGGGTTAGGGAT-3’ secondo il protocollo descritto nel<br />

paragrafo precedente.<br />

Test fenotipici sui trasformanti BY<br />

La presenza del plasmide con il promotore GAL1 all’<strong>in</strong>terno dei <strong>ceppi</strong> BY + ,<br />

ha reso necessaria l’aggiunta <strong>di</strong> galattosio nei terreni <strong>di</strong> test per consentire<br />

l’espressione del gene FLO11. Vengono <strong>di</strong> seguito riportate le variazioni<br />

apportate ai protocolli per testare i trasformanti.<br />

Per ogni prova le precolture sono state fatte su SC-URA al 2% <strong>di</strong><br />

galattosio a 30 °C <strong>in</strong> agitazione.<br />

Idrofobicità con ottano e adesione su superfici <strong>di</strong> polistirene: Le cellule<br />

sono state portate <strong>in</strong> fase esponenziale su SC allo 0,1% e allo 0,5% <strong>di</strong><br />

galattosio.<br />

Quantificazione del biofilm: Al terreno <strong>di</strong> florizzazione SC-URA + etanolo al<br />

4% è stato aggiunto il 2% <strong>di</strong> galattosio.<br />

P<strong>in</strong>na Clau<strong>di</strong>a<br />

<strong>Stu<strong>di</strong>o</strong> dell’aggregazione <strong>cellulare</strong> <strong>in</strong> <strong>ceppi</strong> v<strong>in</strong>ari <strong>di</strong> <strong>Saccharomyces</strong> cerevisiae<br />

Tesi <strong>di</strong> Dottorato <strong>in</strong> Biotecnologie Microbiche Agroalimentari<br />

Università degli Stu<strong>di</strong> <strong>di</strong> Sassari<br />

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