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(19) 대한민국특허청(KR) (12) 공개특허공보(A) - Questel

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대하여 평가된다. 나머지 상층액은 본래대로 방치되고, 그리고 평판은 -70℃에서 동결된다. 이들 조건 하에, 배<br />

양 과정은 전형적으로, 항원-특이적 B 세포의 클론 집단을 포함하는 혼합된 세포 집단을 포함하는 웰을 발생시<br />

킨다, 다시 말하면, 단일 웰은 원하는 항원에 특이적인 단일 단일클론 항체만을 포함할 것이다.<br />

실시예 3 원하는 특이성 및/또는 기능적 특성의 단일클론 항체에 대한 항체 상층액의 스크리닝<br />

실시예 2에 따라 생산된 클론 항원-특이적 B 세포 집단을 포함하는 웰로부터 유래된 항체-포함 상층액은<br />

초기에, ELISA 방법을 이용하여 항원 인식에 대하여 스크리닝된다. 이는 선택성 항원 고정화(가령, 스트렙타비<br />

딘 코팅된 평판에 의한 비오틴화된 항원 포획), 비-특이적 항원 평판 코팅, 또는 대안으로, 항원 구축 전략(가<br />

령, 선택성 항원 포획, 그 이후에 이형(heteromeric) 단백질-항원 복합체를 산출하기 위한 결합 파트너 부가)을<br />

포함한다. 항원-양성 웰 상층액은 이후, 리간드에 엄격하게 의존하는 기능-변화 분석에서 선택적으로 조사된다.<br />

이와 같은 한 가지 실례는 재조합 수용체 단백질로 항원 리간드의 자연적인 상호작용을 재현하는 시험관내 단백<br />

질-단백질 상호작용 분석이다. 대안으로, 리간드 의존성이고 용이하게 모니터되는 세포-기초된 반응(가령, 증식<br />

반응)이 이용된다. 현저한 항원 인식과 효능을 보이는 상층액은 양성 웰인 것으로 간주된다. 최초 양성 웰로부<br />

터 유래된 세포는 이후, 항체 회수 상(phase)으로 이전된다.<br />

실시예 4 원하는 항원 특이성의 단일, 항체-생산 B 세포의 회수<br />

세포는 단일 항체 서열을 분비하는 항원-특이적 B 세포의 클론 집단(실시예 2 또는 3에 따라 생산됨)을 포함하<br />

는 웰로부터 분리된다. 분리된 세포는 이후, 단일, 항체-분비 세포를 분리하기 위하여 분석된다. Dynal 스트렙<br />

타비딘 비드는 세포 생존능과 적합한 항원-포함 마이크로비드를 준비하기 위하여 완충 매체 하에, 비오틴화된<br />

표적 항원으로 코팅된다. 그 다음, 항원-적하된 비드, 양성 웰로부터 항체-생산 세포, 그리고 플루오레세인 이<br />

소티오시아네이트(FITC)-표지된 항-숙주 H&L IgG 항체(언급된 바와 같이, 숙주는 임의의 포유동물 숙주, 예를<br />

들면, 토끼, 생쥐, 쥐 등일 수 있다)는 37℃에서 함께 배양된다. 생성된 혼합물은 이후, 유리 슬라이드 상에서<br />

분취량(aliquot)으로 재-피펫팅되고, 따라서 각 분취량은 평균적으로, 단일, 항체-생산 B-세포를 보유한다. 항<br />

원-특이적, 항체-분비 세포는 이후, 형광 현미경을 통해 검출된다. 분비된 항체는 결합된 항원으로 인하여 인접<br />

한 비드 상에 국지적으로 집중되고, 그리고 강한 형광 신호에 기초하여 국지화 정보를 제공한다. 항체-분비 세<br />

포는 이들 분비 세포에 인접하게 형성된 항체-항원 복합체의 FITC 검출을 통해 확인된다. 이러한 복합체의 중심<br />

에서 관찰되는 단일 세포는 이후, 미세조작기(micromanipulator)를 이용하여 회수된다. 세포는 항체 서열 회수<br />

가 시작될 때까지 -80℃에서 보관 동안 에펜도르프 PCR 튜브에서 순간-동결된다.<br />

실시예 5 항원-특이적 B 세포로부터 항체 서열의 분리<br />

항체 서열은 실시예 4에 따라 생산된 단일 분리된 B-세포로부터, 또는 실시예 2에 따라 획득된 클론 B 세포 집<br />

단으로부터 분리된 항원 특이적 B 세포로부터 통합 RT-PCR 기초된 방법을 이용하여 회수된다. 표적 면역글로불<br />

린 유전자(중쇄와 경쇄)의 보존 영역과 불변 영역, 예를 들면, 토끼 면역글로불린 서열에 어닐링하는 프라이머<br />

가 설계되고, 그리고 항체 서열을 획득하기 위하여 2-단계 이중(nested) PCR 회수 단계가 이용된다. 각 웰로부<br />

터 앰플리콘은 회수와 크기 일체성에 대하여 분석된다. 결과의 단편은 이후, 서열 클론형성능(sequence<br />

clonality)을 핑거프린팅(fingerprinting)하기 위하여 AluI로 절단된다. 동일한 서열은 그들의 전기영동 분석에<br />

서 공통의 단편화 패턴을 보인다. 유의하게는, 세포 클론형성능을 입증하는 이러한 공통의 단편화 패턴은 일반<br />

적으로, 초기에 1000개 세포/웰까지 도말된 웰에서도 관찰된다. 최초 중쇄와 경쇄 앰플리콘 단편은 이후, 클로<br />

닝을 위한 DNA의 개별 조각을 준비하기 위하여 HindIII과 XhoI, 또는 HindIII과 BsiWI로 제한 효소 절단된다.<br />

결과의 절단물은 이후, 플라스미드 증식과 생산을 위하여 발현 벡터 내로 결찰되고 세균 내로 형질전환된다. 콜<br />

로니는 서열 특성화를 위하여 선별된다.<br />

실시예 6 원하는 항원 특이성 및/또는 기능적 특성의 단일클론 항체의 재조합 생산<br />

공개특허 10-2011-0091780<br />

단일 단일클론 항체를 포함하는 각 웰에 대한 정확한 전장 항체 서열이 확립되고, Qiagen 고체-상 방법을 이용<br />

하여 miniprep DNA가 준비된다. 상기 DNA는 이후, 재조합 전장 항체를 생산하기 위하여 포유동물 세포를 형질감<br />

염시키는데 이용된다. 가공되지 않은 항체 산물은 항원 인식에 대하여 조사되고, 그리고 재조합 항체 단백질에<br />

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