Abschlussbericht

Antifoulingkonzepte für Sensoren für das Wassermonitoring durch sterisch
optimierte Tetraetherlipid-Coatings
PTKA-WTE
Abb. 42: Kammer zum Bewuchs von Slides mit Biofilmen
Mikroskopische Aufnahme (20x) von auf einem
B33-Slide adsorbierten Partikeln
In der Aufnahme sind adsorbierte Partikel unterschiedlicher Größe und Form und größere angelagerte
Strukturen zu erkennen. Mit dieser Probe wurden vergleichende Messungen der Fluoreszenzintensität
und –lebensdauer bei uv-Anregung (337 nm) mit dem Fluoreszenzreader LF 502 NanoScan FLT
(IOM) durchgeführt. Die Detektion erfolgte bei 488 nm. Es wurden die Signale des inkubierten und
eines nicht inkubierten Slides verglichen. Es erwies sich, dass die Signale beider Slides sowohl
hinsichtlich der Fluoreszenzintensität als auch der Fluoreszenzabklingcharakteristik nicht
unterschieden werden können. Ursache war vermutlich einerseits die zu starke Eigenfluoreszenz der
Glasmatrix als auch andererseits die noch zu „dünne“ Besiedelung der Glasoberfläche.
Biofilm auf einem Quarzslide
Aufgrund der starken Eigenfluoreszenz eines Glasträgers wurden daraufhin Mikroskop-Objektträger
aus Quarzglas in die Halterung eingesetzt und für mehrere Monate ebenfalls mit Teltowkanalwasser
inkubiert. Auch bei diesem Träger bildeten sich nicht-homogene Bewuchsstrukturen aus.
Abb. 43: Mikroskopische Aufnahme der auf einem Quarzglasträger anhaftenden organischen Materie
nach einer Inkubation von 2 Monaten (10x-Objektiv)
Wiederum wurden mit dem Fluoreszenzreader LF 502 NanoScan FLT (Anregung: 337 nm, Detektion:
450 nm) vergleichende Messungen eines inkubierten und eines nicht inkubierten Slides durchgeführt.
Der inkubierte Träger wurde nach der Entnahme aus dem Inkubationsgefäß mit destilliertem Wasser
abgespült und sofort, in noch feuchtem Zustand ortsaufgelöst vermessen. Als Messschema wurde das
Overlay einer 1536-Well-Platte gewählt, welches einem Raster von 2,25 x 2,25 mm entspricht:
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