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Regulationsmechanismen von Oxacillinresistenz und Biofilmbildung ...

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2 Material <strong>und</strong> Methoden 47<br />

der 2 -ΔΔC T Methode 166 berechnet. Als Referenzgen wurde gyrB ausgewählt, da es als<br />

essentielles Gen (housekeeping gene) einer möglichst geringen Regulation unterliegt.<br />

Im ersten Schritt wurde der C T Wert des Referenzgenes (gyrB) vom C T Wert des zu<br />

untersuchenden Gens abgezogen (ΔC T = C T Zielgen – C T Referenzgen). Nach dieser<br />

Normierung wurde vom ΔC T Wert der Deletionsmutante der ΔC T Wert der Wildtypkontrolle<br />

subtrahiert (ΔΔC T = ΔC T Deletionsmutante - ΔC T Wildtypkontrolle). Der<br />

relative Expressionsunterschied zwischen dem Gen der entsprechenden Mutante <strong>und</strong><br />

dem Wildtyp ergab sich somit aus 2 -ΔΔC T.<br />

Die real time-PCR wurde mit den iQ SYBR Green Supermix Reagenzien in einem<br />

iCycler iQ Thermocycler durchgeführt. Geeignete Primerpaare für die real time-PCR<br />

wurden mit Hilfe des Programms Beacon Designer 2 ausgewählt (Tabelle 2.5). Mittels<br />

Verdünnungsreihen einer bekannten cDNA wurde in Probemessungen überprüft, ob die<br />

ausgewählten Primer für eine Quantifizierung geeignet sind.<br />

Der cDNA Ansatz (Kapitel 2.2.23) wurde nochmals 1:4 verdünnt <strong>und</strong> 3 µl dieser<br />

Lösung wurden zusammen mit jeweils 10 pmol Primern <strong>und</strong> 25 µl iQ SYBR Green<br />

Supermix in einem Gesamtreaktionsvolumen <strong>von</strong> 50 µl eingesetzt. Die quantitative real<br />

time-PCR wurde unter folgenden Bedingungen durchgeführt: 1. 95 °C, 3 min; 2.<br />

35 x [94 °C, 30 s; 55 °C, 30 s; 72 °C, 30 s]; 3. 4 °C. Alle real time-PCR Analysen<br />

erfolgten jeweils im Dreifachansatz mit mindestens drei unabhängigen RNA<br />

Präparationen.

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