Régulation des populations de Nématodes gastro-intestinaux ...
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Procédures expérimentales<br />
évi<strong>de</strong>nce d’antigènes qui seraient détruits par une fixation préalable <strong><strong>de</strong>s</strong> échantillons, ce qui<br />
est le cas pour les marqueurs membranaires qui nous intéressaient : CD4+ et CD8+.<br />
Les anticorps primaires utilisés dans ces <strong>de</strong>ux cas sont :<br />
- un anticorps spécifique <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes T CD4+ : mouse anti-ovine CD4,<br />
MCA2213 (SEROTEC), dilution 1/2000 ème ,<br />
- un anticorps spécifique <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes T CD8+ : mouse anti-bovine CD8,<br />
MCA837G (SEROTEC), dilution 1/800 ème .<br />
Là encore, la réactivité <strong>de</strong> ces anticorps dans l’espèce ovine est connue et précisée par le<br />
fabricant.<br />
Figure n°17 : Coupe histologique <strong>de</strong> caillette d’ovin infesté par H. contortus mettant en<br />
évi<strong>de</strong>nce <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes CD4+ (marquage immunohistochimique sur coupe en congélation,<br />
anticorps anti-CD4, grossissement 1000).<br />
7. ETUDE DE LA LYMPHOPROLIFERATION SPECIFIQUE D’ANTIGENES PARASITAIRES<br />
7.1. Principe<br />
Nous avons choisi d’évaluer l’intensité <strong>de</strong> la réponse immunitaire par un test <strong>de</strong><br />
transformation lymphoblastique in vitro, ou lymphoprolifération. Cette technique permet <strong>de</strong><br />
déterminer la proportion <strong>de</strong> lymphocytes T spécifiques d’un antigène, capables <strong>de</strong> réagir à ce<br />
<strong>de</strong>rnier par une expansion clonale. Elle est applicable aux lymphocytes sanguins, mais<br />
également aux lymphocytes tissulaires et, en particulier, ceux <strong><strong>de</strong>s</strong> structures ganglionnaires.<br />
L’antigène parasitaire est processé par <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules présentatrices d’antigènes et présenté aux<br />
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