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Régulation des populations de Nématodes gastro-intestinaux ...

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Procédures expérimentales<br />

évi<strong>de</strong>nce d’antigènes qui seraient détruits par une fixation préalable <strong><strong>de</strong>s</strong> échantillons, ce qui<br />

est le cas pour les marqueurs membranaires qui nous intéressaient : CD4+ et CD8+.<br />

Les anticorps primaires utilisés dans ces <strong>de</strong>ux cas sont :<br />

- un anticorps spécifique <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes T CD4+ : mouse anti-ovine CD4,<br />

MCA2213 (SEROTEC), dilution 1/2000 ème ,<br />

- un anticorps spécifique <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes T CD8+ : mouse anti-bovine CD8,<br />

MCA837G (SEROTEC), dilution 1/800 ème .<br />

Là encore, la réactivité <strong>de</strong> ces anticorps dans l’espèce ovine est connue et précisée par le<br />

fabricant.<br />

Figure n°17 : Coupe histologique <strong>de</strong> caillette d’ovin infesté par H. contortus mettant en<br />

évi<strong>de</strong>nce <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes CD4+ (marquage immunohistochimique sur coupe en congélation,<br />

anticorps anti-CD4, grossissement 1000).<br />

7. ETUDE DE LA LYMPHOPROLIFERATION SPECIFIQUE D’ANTIGENES PARASITAIRES<br />

7.1. Principe<br />

Nous avons choisi d’évaluer l’intensité <strong>de</strong> la réponse immunitaire par un test <strong>de</strong><br />

transformation lymphoblastique in vitro, ou lymphoprolifération. Cette technique permet <strong>de</strong><br />

déterminer la proportion <strong>de</strong> lymphocytes T spécifiques d’un antigène, capables <strong>de</strong> réagir à ce<br />

<strong>de</strong>rnier par une expansion clonale. Elle est applicable aux lymphocytes sanguins, mais<br />

également aux lymphocytes tissulaires et, en particulier, ceux <strong><strong>de</strong>s</strong> structures ganglionnaires.<br />

L’antigène parasitaire est processé par <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules présentatrices d’antigènes et présenté aux<br />

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