Régulation des populations de Nématodes gastro-intestinaux ...
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Cytokine Activité biologique<br />
Contexte bibliographique<br />
IL-3 Facteur <strong>de</strong> croissance pour cellules souches hématopoïétiques<br />
Mastocytose<br />
IL-4 Inhibition <strong>de</strong> la production d’IFN-γ et <strong>de</strong> la synthèse <strong>de</strong> cytokines inflammatoires (IL-1, TNF) par<br />
les macrophages<br />
Croissance, survie et différenciation <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes T en cellules Th2<br />
Activation, croissance et commutation isotypique <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes B (production d’IgE et d’IgG1)<br />
Contraction <strong><strong>de</strong>s</strong> muscles lisses<br />
Hyperplasie <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules à mucus<br />
IL-5 Différenciation <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes B et production d’IgA<br />
Croissance, différenciation, survie, migration et activation <strong><strong>de</strong>s</strong> éosinophiles<br />
Hyperplasie <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules à mucus<br />
IL-6 Différentiation <strong><strong>de</strong>s</strong> lymphocytes B en plasmocytes produisant <strong><strong>de</strong>s</strong> immunoglobulines<br />
IL-9 Stimulation <strong>de</strong> la production d’IgE<br />
Eosinophilie, mastocytose, hyperplasie <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules à mucus<br />
IL-10 Inhibition <strong>de</strong> la voie Th1 par les lymphocytes T<br />
Inhibition <strong>de</strong> la libération <strong>de</strong> cytokines par les macrophages<br />
Croissance <strong><strong>de</strong>s</strong> mastocytes<br />
IL-13 Production d’IgE<br />
Hyperplasie <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules à mucus<br />
Contraction <strong><strong>de</strong>s</strong> muscles lisses<br />
Eotaxine Chimio-attraction <strong><strong>de</strong>s</strong> éosinophiles dans les sites tissulaires<br />
Tableau n°9 : Activité biologique <strong><strong>de</strong>s</strong> principales cytokines Th2 (d’après Kishimoto et al.,<br />
1995 ; Garcia-Zepeda et al., 1996 ; Fra<strong>de</strong>lizi et Theze, 1998 ; Janeway et al., 2001b).<br />
*Rôle <strong><strong>de</strong>s</strong> polynucléaires éosinophiles :<br />
L’augmentation du nombre <strong>de</strong> polynucléaires éosinophiles circulants ou présents dans les<br />
muqueuses digestives est une caractéristique constante <strong><strong>de</strong>s</strong> infestations par les némato<strong><strong>de</strong>s</strong><br />
<strong>gastro</strong>-<strong>intestinaux</strong>. Une cytokine, l’IL-5, et une chémokine, l’éotaxine, sont les facteurs<br />
principaux <strong>de</strong> la maturation, du recrutement et du chimiotactisme <strong><strong>de</strong>s</strong> polynucléaires<br />
éosinophiles. L’IL-5 permet l’augmentation du pool <strong>de</strong> polynucléaires éosinophiles dans la<br />
moelle osseuse et promeut leur maturation ainsi que l’éosinophilie sanguine (San<strong>de</strong>rson,<br />
1992). L’éotaxine est en revanche responsable <strong>de</strong> leur migration trans-endothéliale et <strong>de</strong> leur<br />
recrutement tissulaire (Dombrowicz et Capron, 2001).<br />
Les fonctions effectrices in vivo <strong><strong>de</strong>s</strong> polynucléaires éosinophiles font encore l’objet <strong>de</strong> débats,<br />
en dépit <strong>de</strong> leur capacité à tuer <strong><strong>de</strong>s</strong> larves d’helminthes in vitro : schistosomules <strong>de</strong> S. mansoni<br />
en présence d’anticorps <strong>de</strong> classe IgG (Butterworth et al., 1975) ou larves infestantes d’H.<br />
contortus (Rainbird et al., 1998 ; Meeusen et Balic, 2000).<br />
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