Régulation des populations de Nématodes gastro-intestinaux ...
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Procédures expérimentales<br />
être estimé grâce à la mesure <strong>de</strong> l’hématocrite (ou pourcentage d’hématies dans le sang). Les<br />
valeurs physiologiques <strong>de</strong> l’hématocrite chez les ovins sont <strong>de</strong> 30-35%.<br />
Le sang est récupéré sur tube EDTA à la jugulaire (le tube servant à estimer l’éosinophilie<br />
sanguine peut également permettre la mesure <strong>de</strong> l’hématocrite). L’analyse doit cependant être<br />
réalisée dans la <strong>de</strong>mi-journée suivant le prélèvement afin d’éviter l’hémolyse. Après<br />
homogénéisation, le sang est prélevé dans un tube capillaire aux extrémités colmatées par <strong>de</strong><br />
la pâte à mo<strong>de</strong>ler. Une centrifugation pendant 5 minutes à 4000 rpm permet la séparation du<br />
culot <strong>de</strong> globules rouges, <strong><strong>de</strong>s</strong> globules blancs (buffy-coat) et du plasma. L’hématocrite est<br />
déterminé grâce à une grille <strong>de</strong> lecture et le résultat exprimé en pourcentage.<br />
4. ETUDE DE L’ORIENTATION DE LA REPONSE IMMUNITAIRE<br />
Nous avons choisi d’étudier l’orientation <strong>de</strong> la réponse immunitaire (polarisation Th1 ou Th2)<br />
par une technique <strong>de</strong> PCR quantitative en système « TaqMan » (GeneAmp 5700 Sequence<br />
Detector, Perkin Elmer). Le terme <strong>de</strong> TaqMan représente, par abus <strong>de</strong> langage, une<br />
contraction <strong><strong>de</strong>s</strong> mots Taq Polymérase et PacMan, et désigne l’appareil <strong>de</strong> mesure utilisé dans<br />
cette technique.<br />
4.1. Principe <strong>de</strong> la PCR quantitative<br />
La PCR correspond à l’amplification d’un fragment d’ADN spécifique, grâce à l’utilisation<br />
d’une ADN polymérase (Taq Polymérase), et d’un couple d’amorces (« primers »)<br />
spécifiques. L’intensité <strong>de</strong> l’amplification <strong>de</strong> l’ADN ainsi obtenue peut être représentée par<br />
une courbe d’allure sigmoï<strong>de</strong>, dépendante du nombre <strong>de</strong> cycles <strong>de</strong> PCR (abscisse) et <strong>de</strong><br />
l’intensité <strong>de</strong> la fluorescence émise (ordonnée). La fluorescence est obtenue par l’utilisation<br />
d’un agent intercalant : le SYBR Green I, colorant qui ne <strong>de</strong>vient fluorescent que lorsqu’il se<br />
lie à l’ADN double brin. L’utilisation <strong>de</strong> ce colorant permet <strong>de</strong> s’abstenir <strong>de</strong> la conception <strong>de</strong><br />
son<strong><strong>de</strong>s</strong> spécifiques. Toutefois, la fluorescence mesurée peut alors provenir d’une<br />
amplification non spécifique, d’où l’intérêt <strong>de</strong> s’assurer <strong>de</strong> la spécificité du couple d’amorces<br />
utilisé ainsi que <strong><strong>de</strong>s</strong> produits <strong>de</strong> PCR.<br />
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