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Régulation des populations de Nématodes gastro-intestinaux ...

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Procédures expérimentales<br />

- culture en l’absence <strong>de</strong> tout mitogène ou antigène parasitaire (puits contrôles, 6 par<br />

plaque).<br />

Chaque modalité est réalisée en triplicate.<br />

7.3. Interprétation <strong><strong>de</strong>s</strong> résultats<br />

La prolifération <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules en fin <strong>de</strong> culture est évaluée par un test colorimétrique (CellTiter<br />

96 Aqueous One Solution Cell Proliferation Assay, Promega). La <strong>de</strong>nsité optique (DO) <strong>de</strong><br />

chaque puits est déterminée par spectrophotométrie à une longueur d’on<strong>de</strong> <strong>de</strong> 450 nm.<br />

Les résultats sont exprimés par un in<strong>de</strong>x <strong>de</strong> stimulation (SI) déterminé par la formule :<br />

SI = ((DO moyenne <strong><strong>de</strong>s</strong> triplicates <strong>de</strong> culture en présence d’antigène parasitaire / DO<br />

8. ANALYSES STATISTIQUES<br />

moyenne <strong><strong>de</strong>s</strong> six puits contrôles) x100) –100<br />

Les comparaisons entre les différents groupes expérimentaux et entre les différentes dates <strong>de</strong><br />

la cinétique ont été effectuées au moyen <strong>de</strong> tests statistiques non paramétriques (Kruskall-<br />

Wallis, Mann-Whitney) grâce au logiciel SYSTAT. Le suivi <strong>de</strong> certains paramètres<br />

(éosinophilie sanguine, coproscopies…) sur les mêmes animaux à <strong><strong>de</strong>s</strong> dates successives a fait<br />

l’objet d’une analyse <strong>de</strong> variance en données répétées (SYSTAT). Une probabilité inférieure à<br />

5% a été considérée comme significative.<br />

Les analyses discriminantes ont été réalisées avec le logiciel STAT-ITCF (Institut Technique<br />

<strong><strong>de</strong>s</strong> Céréales et <strong><strong>de</strong>s</strong> Fourrages, 1991). L’interprétation <strong>de</strong> cette analyse multivariée a été faite<br />

selon Lebart et al. (1995). Elle permet <strong>de</strong> déterminer les corrélations entre les variables<br />

étudiées et <strong>de</strong> déterminer celles ayant un poids significatif dans l’analyse. Cette analyse<br />

détermine <strong>de</strong>ux axes discriminants (nombre <strong>de</strong> groupes moins 1), qui sont <strong><strong>de</strong>s</strong> combinaisons<br />

linéaires entre les variables quantitatives mesurées. Ces <strong>de</strong>ux combinaisons linéaires sont<br />

choisies pour permettre une discrimination optimale entre les différents groupes : variabilité<br />

maximale entre les groupes et variabilité minimale au sein d’un groupe donné. Les<br />

corrélations entre les différentes variables sont représentées par un cercle : les variables<br />

positivement corrélées entre elles sont très proches sur le cercle, alors que les variables<br />

négativement corrélées sont situées sur <strong><strong>de</strong>s</strong> côtés opposés du cercle (Figure n°18).<br />

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