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Régulation des populations de Nématodes gastro-intestinaux ...

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4.3. Isolement <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules CD4 positives du nœud lymphatique abomasal pour<br />

extraction spécifique <strong><strong>de</strong>s</strong> ARN <strong>de</strong> cette fraction cellulaire.............................................91<br />

4.4. De l’ARN à l’ADN complémentaire (ADNc)… .......................................................92<br />

4.5. PCR quantitative....................................................................................................92<br />

5. EXPLORATION DE LA REPONSE HUMORALE GENERALE GENERALE ET LOCALE............94<br />

5.1. Collecte <strong><strong>de</strong>s</strong> prélèvements ......................................................................................94<br />

5.2. Préparation <strong><strong>de</strong>s</strong> antigènes......................................................................................94<br />

5.3. Détermination <strong><strong>de</strong>s</strong> conditions optimales pour l’ELISA ...........................................95<br />

5.4. Technique ELISA ...................................................................................................98<br />

6. ETUDE DE LA REPONSE CELLULAIRE LOCALE ..............................................................98<br />

6.1. Histologie conventionnelle et immunohistochimie sur coupes en paraffine .............99<br />

6.1.1. Collecte <strong><strong>de</strong>s</strong> prélèvements ...............................................................................99<br />

6.1.2. Technique histologique ...................................................................................99<br />

6.1.3. Colorations à l’Hémalun/Eosine et au Giemsa .................................................99<br />

6.1.4. Immunohistochimie sur coupes en paraffine..................................................101<br />

6.2. Immunohistochimie sur coupes en congélation.....................................................102<br />

6.2.1. Collecte et technique <strong><strong>de</strong>s</strong> prélèvements..........................................................102<br />

6.2.2. Immunohistochimie.......................................................................................102<br />

7. ETUDE DE LA LYMPHOPROLIFERATION SPECIFIQUE D’ANTIGENES PARASITAIRES.....103<br />

7.1. Principe ...............................................................................................................103<br />

7.2. Technique ............................................................................................................104<br />

7.2.1. Préparation <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules .................................................................................104<br />

7.2.2. Mise en culture et stimulation <strong><strong>de</strong>s</strong> cellules mononucléées..............................104<br />

7.3. Interprétation <strong><strong>de</strong>s</strong> résultats ..................................................................................105<br />

8. ANALYSES STATISTIQUES ...........................................................................................105<br />

CHAPITRE V : RESULTATS.........................................................................................107<br />

PARTIE I : ETUDE DE LA REPONSE IMMUNITAIRE ADAPTATIVE CHEZ DES<br />

AGNEAUX DE RACE SENSIBLE, INRA 401, INFESTES PAR H. CONTORTUS OU T.<br />

COLUBRIFORMIS...........................................................................................................108<br />

ARTICLE I :HAEMONCHUS CONTORTUS (NEMATODA : TRICHOSTRONGYLIDAE) INFECTION<br />

IN LAMBS ELICITS AN UNEQUIVOCAL TH2 IMMUNE RESPONSE........................................111<br />

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