ХІМІЯ ПРИРОДНИХ СПОЛУК» 30-31 жовтня 2012 року - Тернопільський ...

СЕКЦІЯ 5. Онтогенез культивованих та дикорослих видів лікарських рослин
182
З огляду на достатній вміст ФС у рослинній сировині вищезазначених сортів
піретруму дівочого, можна прогнозувати їх подальше дослідження та використання з
метою виготовлення лікарських препаратів.
ПРЯМИЙ ОРГАНОГЕНЕЗ IN VITRO HYPERICUM PERFORATUM L.
Коваль О.С 1 , Тусик О.Т. 1 , Мосула М.З. 2 , Дробик Н.М. 2
1
ДВНЗ «Тернопільський державний медичний університет ім. І. Я. Горбачевського»,
2
Тернопільський національний педагогічний університет імені Володимира Гнатюка
Перспективним джерелом рослинної сировини для отримання лікарських препаратів
широкого спектру дії є види роду Звіробій – Hypericum L. Серед них у фармакопею
України (2008) включено звіробій звичайний (Hypericum perforatum L.) та звіробій
плямистий (Hypericum maculatum Crantz.). Їхні лікувальні властивості обумовлені синтезом
переважно у надземній частині та в меншій мірі у підземній таких біологічно активних
речовин (БАР) як флавоноїди, похідні антрацену, ефірні олії, дубильні речовини,
фенолкарбонові кислоти, алкалоїди, ксантони тощо [Маковецька, 1999; Олійник та ін.,
1999; Коновалова, 2007]. Зважаючи на активне використання звіробою в лікарській
практиці, актуальним є отримання додаткового джерела лікарської рослинної сировини з
підвищеним вмістом біологічно активних речовин, що робить доцільним застосування
біотехнологічних методів. Дослідженнями ряду авторів встановлено, що культури тканин
та органів рослин, у тому числі культури звіробою, можуть синтезувати підвищені
кількості БАР, а також вторинні метаболіти, не властиві для інтактних рослин [Носов,
1994; Menković et al., 2000; Patocka, 2003]. Поряд із цим, у багатьох випадках у процесі
субкультивування або ж зразу в первинних культурах спостерігається значне зниження
вмісту БАР; їх синтез відновлюється після утворення морфогенних структур.
Тому метою цієї роботи було отримання регенерантів шляхом прямого органогенезу
з експлантів стеблового, листкового та кореневого походження рослин H. perforatum.
В експерименті використовували одержані з насіння асептичні рослини H. perforatum
(хутір Драгоманівка Тернопільського району Тернопільської області) [Коваль та ін, 2011].
Для індукції регенерації листкові (площею 0,16–0,25 см 2 ), стеблові та кореневі (завдовжки
близько 5-6 мм) експланти асептичних рослин висаджували на живильне середовище
Мурасіге-Скуга (МС) з половинним вмістом макро- та мікросолей (МС/2), доповнене
різними концентраціями 6-бензиламінопурину (БАП) та індолілоцтової кислоти (ІОК).
Оцінювання ефективності регенерації (ЕР) проводили через 1,5–2 місяці і визначали за
формулою: ЕР = R/N, де R – кількість регенерантів; N – кількість висаджених експлантів.
Для з‟ясування особливостей регенерації крім ЕР визначали ще відсоток регенерації (ВР),
який обчислювали за формулою: ВР = (Nr/N)x100%, де Nr – кількість експлантів, на яких
утворилися регенеранти; N – кількість висаджених експлантів.
Ефективність регенерації залежала від типу експланта та вмісту регуляторів росту у
середовищі. На усіх експлантах відбувалася регенерація пагонів, відсоток якої складав 100.
У той же час, здатність до ризогенезу була значно нижчою: ВР коренів із кореневих
експлантів становив 48,4, із стеблових – 5,2, із листкових – 4.
Встановлено, що більш сприятливим для регенерації пагонів із стеблових експлантів
було живильне середовище з 2 мг/л БАП та 1 мг/л ІОК: ефективність гемогенезу становила
7,9 пагін/експл. Зменшення концентрації обох регуляторів росту вдвічі призводило до
зниження ЕР до 5,5 пагін/експл. У той же час, ЕР пагонів із кореневих експлантів на
середовищі, доповненому 1 мг/л БАП та 0,5 мг/л ІОК, була в 2,3 раза вищою порівняно з
іншим протестованим варіантом середовища. Аналіз ефективності ризогенезу показав, що
цей показник був значно нижчим (у 10-28 разів) порівняно з регенерацією пагонів і досягав
максимуму (0,77 корінь/експл.) на кореневих експлантах на середовищі з 2 мг/л БАП та 1
Матеріали ІІІ Всеукраїнської науково-практичної конференції «Хімія природних сполук» 30-31 жовтня 2012 року