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SEIX 17-20 octobre 2005 - Atelier Calcium

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APPLICATION : ETUDE D’UNE VOIE DE SIGNALISATION CALCIQUE DANS LE<br />

FOLLICULE PILEUX HUMAIN AVEC LA SONDE CAMELEON YC6.1<br />

Céline GOHORY<br />

Centre de Biologie du Développement, UMR 5547, Université Paul Sabatier, 118 route de<br />

Narbonne, 31062 Toulouse Cedex 4<br />

Nous avons testé les performances de la sonde caméléon YC6.1 (Truong et al, <strong>20</strong>01).<br />

Cette sonde est constituée de deux GFP modifiées (CFP et YFP), et de deux fragments de<br />

calmoduline reliés par le peptide CKKp (CaM – dependent kinase kinase, Osawa et al, 1999).<br />

Cette sonde permet, lorsqu‟elle fixe le calcium un phénomène de FRET (Fluorescence<br />

Resonance Energy Transfer) entre CFP et YFP. Le rapport de fluorescence YFP / CFP permet<br />

de mesurer la concentration intracellulaire en calcium.<br />

La sonde est introduite par transfection. Le protocole de transfection ainsi que la<br />

fonctionnalité de la sonde ont tout d‟abord été testés sur des cellules Hela (lignée cellulaire de<br />

kératinocytes issue d‟un cancer des ovaires humain). La lipofectine (Invitrogen) est utilisée<br />

comme agent transfectant.<br />

Les cellules sont cultivées dans un milieu D - MEM (Milieu de Eagle modifié par<br />

Dulbecco) à forte teneur en glucose (Gibco) supplémenté de facteurs de croissance et<br />

d‟antibiotiques.<br />

Dès que les cellules atteignent un pourcentage de confluence suffisant (de l‟ordre de<br />

70%), elles sont transfectées (4µg d‟ADN) à l‟aide de la lipofectine selon le protocole<br />

Invitrogen. Les mesures peuvent être réalisées 24 heures après la transfection.<br />

Les cellules sont alors transférées dans un milieu non autofluorescent préparé au<br />

laboratoire : le KRH (Krebs Ringer Hepes Buffer) dont la composition est la suivante : KCl<br />

5mM, MgSO 4 1.25 mM, NaCl 125 mM, Hepes 25 mM, Glucose 8 mM, KH 2 PO 4 1.25 mM, et<br />

CaCl 2 1.5 mM. L‟imagerie est réalisée sur un microscope inversé à épifluorescence (Nikon<br />

Eclipse TE<strong>20</strong>00 – E, objectif à immersion x63 N.A. : 1.4). L‟enregistrement des mouvements<br />

de calcium est effectué grâce à une caméra triCCD et le logiciel Aquacosmos 2.5 (système<br />

Ashura commercialisé par la société Hamamatsu). Une addition de 10 µM d‟histamine dans<br />

le milieu extérieur entraîne une libération de calcium à partir des stocks internes. Dans de<br />

nombreux cas nous observons des oscillations de la concentration en calcium intracellulaire<br />

pouvant durer plus de 10 minutes.<br />

Cette validation nous a permis d‟étudier le rôle prépondérant joué par une voie de<br />

signalisation calcique dans le développement du follicule pileux humain.<br />

A l‟heure actuelle, aucun traitement pour palier la chute de cheveux ne donne entière<br />

satisfaction, il est donc important de comprendre quels sont tous les mécanismes moléculaires<br />

mis en jeu lors du cycle pilaire. Il a été démontré que la protéine noggin, antagoniste des<br />

BMPs joue un rôle dans ce cycle en participant à l‟initiation de la phase de croissance du poil<br />

(Botchkarev et al, <strong>20</strong>01). Or, il a été démontré dans notre équipe que noggin était capable<br />

d‟induire une augmentation de calcium intracellulaire dans les cellules de l‟ectoderme lors de<br />

la détermination neurale chez le xénope (Leclerc et al, 1997). Nous avons donc voulu<br />

analyser l‟effet de noggin dans des cellules du follicule pileux humain lors de la phase de<br />

croissance du cheveu (phase anagène).<br />

A partir de biopsies de cuirs chevelus, nous avons effectué des microdissections de<br />

follicules pileux en phase de croissance afin de prélever les principaux tissus qui le composent<br />

pour réaliser des primo – cultures de cellules de plusieurs types :<br />

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