guía práctica de experimentos para - Ecologia e Gestão Ambiental

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FOR ECOHYDROLOGY 3. Análisis de los resultados y discusión 1. ¿Cuáles son las unidades de análisis que están potencialmente perturbadas en mayor y menor proporción, con base en los cálculos del índice PHI? 2. ¿Cambian en función de los diferentes esquemas de peso? 3. ¿Cuáles son los indicadores más importantes para la estimación del impacto humano en la calidad del agua? 4. Identifique una o dos variables que pueden ser usadas como indicadores del impacto humano (no utilizadas en este ejercicio). 5. ¿Cuáles son los impactos principales relacionados con los usos y actividades en este suelo (analice los relacionados con el desarrollo rural, distribución urbana/población y/o perfil industrial? REFERENCIAS 1. Cendrero U. A. 1997. Indicators of sustainable development for decision making. Naturzale. 12:5-25. 2. Eastman J. R. 2001. IDRISI: Guide to GIS and Image processing. Vol.2. Clark Univrsity. 3. Gabellone N. A, Sarandón R., Claps C. 2003. Caracterización y zonificación ecológica de la cuenca del río Salado. In: Maiola et al. (eds). Inundaciones en el área pampeana. Editorial de la Universidad de La Plata Cap. 5:36. 4. Gallopin C. G. 1997. Indicators and their use: information for decision-making. In: B. Moldan, S. Billharz (eds). Sustainability Indicators: report of the project on indicators of sustainable development. SCOPE, John Wiley & Sons, Ltd. 13-27 pp. 5. Hammond A. Adriaanse A., Rodenburg E., Bryant D., Woodward R. 1995. Environmental Indicators: A Systematic Approach to Measuring and Reporting on Environmental Policy Performance in the Context of Sustainable Develop-ment. World Resource Institute. 43 pp. 6. Hunsaker C.T., Carpenter D.E. (eds.). 1990. Ecological Indicators for the Environmental Monitoring and Assessment Program. EPA 600/3-90/060. US Environmental Protection Agency, Office of Research and Development, Research Triangle Park, NC. GUÍA DE EXPERIMENTOS PRÁCTICOS PARA ECOHIDROLOGÍA 116 7. Mckenzie D. H., Hyatt D.E., McDonald V.J. (ed.). 1992. Ecological Indicators. Vol. 1 & 2. Elsevier Applied Science, London, New York. 1565 pp. 8. Moldan B., Billharz S., Matravers R. (eds). 1997. Sustainability Indicators: A report on the project on indicators of sustainable development. SCOPE 58. John Wiley & Sons. England. 415 pp. 9. Quantum GIS Project. 2004. User and Installation Guide. Version 0.9.0 ’Ganymede’. Internet: http://www.qgis.org. 10. Treweek J. 1999. Ecological Impact Assessment. Blackwell Science LTD., Oxford. 351 pp. 11. Zalewski M. 2000. Ecohydrology-the scientific background to use ecosystem properties as management tools toward sustainability of water resources. Guest Editorial in Ecological Engineering 16:1-8. ANEXOS 1. Carpeta: ejemplo1 2. Fichero: ejemplo.xls 3. Programa: Q-GIS (qgis_setup0.9.0.26_10_2007.exe; http://www.qgis.org).
20. UNA EXPERIENCIA EN EVALUACIÓN ECOLÓGICA DE AGUAS DE ESTUARIO O MARINAS. Objetivos del capítulo Describir un programa simple de seguimiento ecológico para aguas de estuario o marinas. La contribución del tamaño celular de diferentes grupos de algas a la biomasa de fitoplancton total será obtenida a partir de mediciones periódicas de nutrientes y concentraciones de pigmentos fotosintéticos en aguas marinas. Principio EH: 1 – uso de la biota como indicadores de impacto INTRODUCCIÓN La alteración de los aportes de agua dulce en los estuarios y zonas costeras afecta variables como la salinidad o tiempo de residencia de nutrientes y puede perturbar el funcionamiento de ecosistemas costeros y la disponibilidad de recursos (Estevez 2002, ver también Programa de Ecohidrología de la UNESCO en http://typo38.unesco.org/en/ecohydrology.html). En este contexto ecohidrológico, la íntima relación entre medioambiente y fitoplancton hace de las comunidades de fitoplancton costero un buen indicador de las perturbaciones por intervención humana, o fluctuaciones naturales, en las condiciones ambientales de las aguas de estuario o costeras. Las concentraciones de nutrientes y estimaciones de la biomasa de fitoplancton son variables fundamentales para la evaluación del régimen ecológico de los ecosistemas marinos. Además, el espectro de tamaños del fitoplancton está íntimamente relacionado con los niveles más altos de alimento en la red. Así pues, estas variables pueden ser usadas para establecer un estatus ecológico de las masas de aguas marinas. ELABORACIÓN DE LA EXPERIENCIA 1. Descripción general Características químicas y/o bioquímicas del agua de mar serán comparadas en al menos dos puntos/estaciones, donde se espera que estén bajo condiciones ambientales diferentes. Entre las variables del agua marina que deben GUÍA PRÁCTICA DE EXPERIMENTOS PARA ECOHIDROLOGÍA 117 ser medidas están las concentraciones de macronutrientes, concentración de clorofila a y tamaño celular del fitoplancton (Sieburth et al. 1978, ecuación 2 véase Anexo) grupos derivados de las concentraciones de los pigmentos marcadores. Las concentraciones de fosfato, silicato, nitrato y amonio pueden ser determinadas utilizando kits apropiados o un autoanalizador y técnicas espectrofotométricas. Después de filtrar la muestra, la clorofila es extraída y medida espectrofotométricamente. Finalmente, un HPLC es necesario para la separación y medida de los pigmentos marcadores. 2. Diseño experimental Estuario del Guadiana, Portugal (foto NASA, Tomasz Boski) El primer paso será la selección de dos estaciones de muestreo representando masas de agua diferentes. Las estaciones deben encontrarse a diferentes distancias de la fuente de nutrientes (p. ej., la desembocadura de un rio, una estación de acuacultura marina). La experiencia puede realizarse durante un pico anual de fitoplancton, por ejemplo, en primavera. Alternativamente, pueden realizarse mediciones a diferentes profundidades en una sola estación costera de muestreo, durante la estación de mayor estratificación (p. ej., en medio del verano). Muestras de agua de 2.5 l deben ser recogidas 2 - 3 veces por semana, en horarios similares, durante al menos 2 semanas, Utilizar una botella oceanográfica de muestreo para recoger muestras de agua superficial y/o muestras a diferentes profundidades (2 m o más). Mantener las muestras en un lugar fresco y oscuro hasta su llegada al laboratorio. El
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