guía práctica de experimentos para - Ecologia e Gestão Ambiental

cantidad será expresada en la concentración de
Clorofila a. La Clorofila a será medirá in vivo con
un fluorímetro o será procesada para el análisis
espectofotométrico (Holm-Hansen 1978,
Madden, Day 1992). Los cambios en la
concentración de oxígeno disuelto, pH y
temperatura en el agua serán medidos con un
conjunto de electrodos. Análisis
complementarios de la cantidad total de
bacterias en el agua podrán ser provistos con
microscopios de fluorescencia en muestras
teñidas con DAPI (Porter, Feig 1980).
2. Diseño experimental
El diseño del experimento considera 3 variantes
-3
de concentraciones diferentes de PO4 : agua
natural de lago usada en la opción de control,
~20 μg dm -3 y ~200 μg dm -3 . Esto es para
demostrar cómo el mecanismo enzimático de la
liberación de P funciona en diferentes niveles de
cantidad de ortofosfato. Cada opción se prepara
por triplicado en un recipiente de vidrio de al
menos 10 dm -3
(deberían prepararse 9
recipientes en total).
El agua tomada del lago debería ser primero
filtrada a través de una red de plancton de malla
GUÍA PRÁCTICA DE EXPERIMENTOS PARA ECOHIDROLOGÍA
de 50 µm para eliminar el zooplancton, que se
alimenta de fitoplancton y podría ser una fuente
de subestimación de la Clorofila a durante el
experimento. A continuación, el agua debe ser
filtrada otra vez a través de una red de plancton
de maya de 20 µm para eliminar el fitoplancton.
El fitoplancton debe cuidadosamente recogido
en un recipiente mientras se prepara para la
utilización de 3 variantes de los experimentos
(Figura 1). Después de la filtración debe ser
hecha una medición inicial de la concentración
de ortofosfato en el agua. Una vez que se
-3
conozca la concentración se prepara 30 dm de
agua para cada variante por la dilución de agua
del lago con agua destilada para obtener una
-3 -3
concentración baja de PO4 (~20 μg dm ) y por
adición de K2HPO4. para conseguir la más alta
(~200 μg dm -3
). Rellenar los recipientes con
agua y añadir cuidadosamente el plankton
recogido en cantidades idénticas para cada
recipiente. En el punto de partida del
experimento todos los parámetros deben ser
analizados.
Los recipientes deben ser dejados para su
incubación, bien iluminados, durante 2 semanas.
Las muestras para los análisis deben tomarse, al
menos, cada dos días
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