guía práctica de experimentos para - Ecologia e Gestão Ambiental

6. Con base e los valores de la producción
primaria del fitoplancton y el impacto de
consumo del microzooplancton obtenidos,
discutir la variabilidad esperada a corto
plazo de la biomasa de fitoplancton in situ.
Integrar la información sobre la pérdida de
otros procesos pertinentes de fitoplancton
en el sistema acuático.
7. Durante este experimento práctico, la
concentración de clorofila a fue utilizada
como un proxy de la biomasa de
fitoplancton. No obstante, el análisis
microscópico también puede ser utilizado
para cuantificar la abundancia de
determinados grupos de fitoplancton y
protistas fagotróficos en diluciones
diferentes al principio y al final de cada
experimento. Discuta las ventajas de tener
este tipo de información sobre el
tratamiento y la interpretación de los datos
mediante experimentos de dilución.
REFERENCIAS
1. Calbet A. & Landry M. 2004. Phytoplankton
growth, microzooplankton grazing, and carbon
cycling in marine systems. Limnology and
Oceanography 49:51-57.
2. Domingues R.B., Barbosa A.B. 2009. Effects of
nutrient and light enrichment on phytoplankton
growth. In: L. Chícharo, I. Wagner, M. Lapinska
and M Zalewski (eds). Practical Experiments
Guide for Ecohydrology, UNESCO-Bresce,
UAlg, EcoReach, ERCE a/u UNESCO, PAN,
DAE UL..
3. Holmes R.W. 1970. The Secchi disc in turbid
coastal waters. Limnology and Oceanography
15:688-694.
4. Landry M. 1993. Estimating rates of growth and
grazing mortality of phytoplankton by the
dilution method. In: P.F. Kemp, B.F. Sherr, E.B.
Sherr and J.J. Cole. Handbook of Methods in
Aquatic Microbial Ecology. Boca Raton, Lewis
Publishers. 715-722 pp.
5. Landry M.R., Hasset R.P. 1982. Estimating the
grazing impact of marine microzooplankton.
Marine Biology 67:283-288.
6. Parsons T.R., Maita Y., Lalli C.M. 1984. A
Manual of Chemical and Biological Methods for
Seawater Analysis. Pergamon Press.
7. Poole H.H., Atkins W.R.G. 1929. Photoelectric
measurements of submarine illumination
throughout the year. Journal Marine Biological
Association United Kingdom 16:297-325.
8. Zalewski M. 2000. Ecohydrology-the scientific
background to use ecosystem properties as
GUIA DE EXPERIMENTOS PRÁCTICOS PARA ECOHIDROLOGÍA
management tools toward sustainability of
water resources. Guest Editorial in Ecological
Engineering 16:1-8.
ANEXO
Formulas:
ecuación 1 Im = Io.(1-e -Ke.Zm ).(1/ Ke.Zm)
ecuación 2 Ke = 1.7/ Zs
ecuación 3 Ke = 1.4/ Zs
ecuación 4 r i (d -1 ) = (ln Chlt-i – ln Chlo-i)/∆t
ecuación 5 y = ax + b
ecuación 6 ∆ r = r DIL1.0+ – r DIL 1.0
ecuación 7 µ = µo - ∆ r
ecuación 8 PP = (Bo.e µt ) – Bo
ecuación 9
I =100 [(Bo.e µt –Bo)–( Bo.e (µ - g) t – Bo)] /( Bo.e µ t -
Bo)
Leyendas:
Bo – la biomasa de fitoplancton inicial en la
muestra de agua sin diluir (μgC.L -1 )
Chlo-i – concentración de clorofila a en la
dilución i al inicio del experimento (μg.L -1 )
Chlo-i – concentración de clorofila a en el la
dilución i al final del experimento (μg.L -1 )
g – tasa de consumo del microzooplancton
(unidades: d -1 )
l – Impacto del consumo del microzooplancton
sobre la producción de fitoplancton (% de la
producción de fitoplancton se retira diariamente)
I0 – intensidad de luz media en la superficie
(µE.m -2 .s -1 )
Im – intensidad de luz media en la superficie de
mezcla (µE.m -2 .s -1 )
Ke – coeficiente de extinción de la luz vertical
(m 1 )
PP – la producción de fitoplancton en red
(µgC.L -1 .d -1 )
ri – tasa de crecimiento aparente del fitoplancton
en la dilución i (d -1 )
r DIL1.0+ – tasa de crecimiento aparente del
fitoplancton en muestras de agua sin diluir
enriquecida de nutrientes (d -1 )
r DIL1.0 –tasa de crecimiento aparente del
fitoplancton en muestras de agua sin diluir y sin
adiciones de nutrientes (d -1 )
t – tiempo (d)
∆t – duración de la incubación (d)
µ –tasa de crecimiento instantánea in situ del
fitoplancton (d -1 )
µ0 –la tasa de crecimiento instantáneo potencial
del fitoplancton (d -1 )
Zm – profundidad del disco de Secchi (m)
Zs – profundidad de la capa de mezcla (m)
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