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Quantitative Analyse von Arzneistoff-Membran-Wechselwirkungen ...

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Untersuchungen zu intermolekularen <strong>Wechselwirkungen</strong> in <strong>Membran</strong>en<br />

Abbildung 30: Nomenklatur der Wasserstoffkerne<br />

in einer allgemeinen Grundstruktur<br />

Zur <strong>Analyse</strong> der charakteristischen Signale der Trizyklen wurden Literaturangaben herangezogen<br />

(Attwood et al. 1994). Eine spezielle Signalzuordnung der äquatorial bzw. axial ständigen Wasserstoffatome<br />

im Piperazinring, Hd1-2 und He1-2 , war für den experimentellen Ansatz nicht notwendig.<br />

Da es bei Änderungen der Messbedingungen und der Lösungsmittelzusammensetzung zu<br />

Verschiebungen der Resonanzfrequenzen kommt, wurde bevorzugt in überwiegend wässrigen<br />

Puffersystemen unterhalb der Selbstassoziationskonzentration gearbeitet (Attwood et al. 1994).<br />

Relativ gut aufgelöste eindimensionale 1 H-Spektrum <strong>von</strong> Eilecithin wurden nach der Filtration<br />

und Entgasung einer Liposomensuspension in D2O mit einem Lipidgehalt <strong>von</strong> 10 mM erhalten. Durch<br />

einen Vergleich der chemischen Verschiebungen und der Formen der Signale der Referenzspektren<br />

(Kuroda und Kitamura 1984; Ellena et al. 1985; Holte und Gawrisch 1997) mit denen im eigenen<br />

Spektrum ordnete ich die Signale den Strukturelementen eines Phosphatidylcholin-Moleküls zu<br />

(Abb. 31; Tab. 15).<br />

5.5<br />

N+O<br />

5.0<br />

4.5<br />

HOD<br />

M L<br />

K I<br />

4.0<br />

3.5<br />

3.0<br />

2.5<br />

E2 D<br />

E1<br />

Abbildung 31: 1 H-NMR-Spektrum <strong>von</strong> Phosphatidylcholin (Liposomen) in D 2 O<br />

H<br />

G<br />

F<br />

2.0<br />

HO<br />

Hf<br />

1.5<br />

C<br />

He 2<br />

Hg<br />

N<br />

B<br />

1.0<br />

H 7<br />

H 8<br />

Hd 2<br />

He 1<br />

A<br />

H 6<br />

H 9<br />

N<br />

0.5<br />

Hb<br />

Hd 1<br />

Hc<br />

S<br />

X<br />

Ha<br />

H 4<br />

H 1<br />

H 3<br />

71<br />

CF3

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