Quantitative Analyse von Arzneistoff-Membran-Wechselwirkungen ...
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Untersuchungen zu intermolekularen <strong>Wechselwirkungen</strong> in <strong>Membran</strong>en<br />
Abbildung 30: Nomenklatur der Wasserstoffkerne<br />
in einer allgemeinen Grundstruktur<br />
Zur <strong>Analyse</strong> der charakteristischen Signale der Trizyklen wurden Literaturangaben herangezogen<br />
(Attwood et al. 1994). Eine spezielle Signalzuordnung der äquatorial bzw. axial ständigen Wasserstoffatome<br />
im Piperazinring, Hd1-2 und He1-2 , war für den experimentellen Ansatz nicht notwendig.<br />
Da es bei Änderungen der Messbedingungen und der Lösungsmittelzusammensetzung zu<br />
Verschiebungen der Resonanzfrequenzen kommt, wurde bevorzugt in überwiegend wässrigen<br />
Puffersystemen unterhalb der Selbstassoziationskonzentration gearbeitet (Attwood et al. 1994).<br />
Relativ gut aufgelöste eindimensionale 1 H-Spektrum <strong>von</strong> Eilecithin wurden nach der Filtration<br />
und Entgasung einer Liposomensuspension in D2O mit einem Lipidgehalt <strong>von</strong> 10 mM erhalten. Durch<br />
einen Vergleich der chemischen Verschiebungen und der Formen der Signale der Referenzspektren<br />
(Kuroda und Kitamura 1984; Ellena et al. 1985; Holte und Gawrisch 1997) mit denen im eigenen<br />
Spektrum ordnete ich die Signale den Strukturelementen eines Phosphatidylcholin-Moleküls zu<br />
(Abb. 31; Tab. 15).<br />
5.5<br />
N+O<br />
5.0<br />
4.5<br />
HOD<br />
M L<br />
K I<br />
4.0<br />
3.5<br />
3.0<br />
2.5<br />
E2 D<br />
E1<br />
Abbildung 31: 1 H-NMR-Spektrum <strong>von</strong> Phosphatidylcholin (Liposomen) in D 2 O<br />
H<br />
G<br />
F<br />
2.0<br />
HO<br />
Hf<br />
1.5<br />
C<br />
He 2<br />
Hg<br />
N<br />
B<br />
1.0<br />
H 7<br />
H 8<br />
Hd 2<br />
He 1<br />
A<br />
H 6<br />
H 9<br />
N<br />
0.5<br />
Hb<br />
Hd 1<br />
Hc<br />
S<br />
X<br />
Ha<br />
H 4<br />
H 1<br />
H 3<br />
71<br />
CF3