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Documento completo, 577 páginas. - Ministerio de Agricultura ...

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CAPÍTULO V: C.A. ANDALUCÍA<br />

Al analizar el resultado <strong>de</strong> la digestión <strong>de</strong> los plásmidos mediante<br />

electroforesis, se observan diferentes patrones <strong>de</strong> bandas en los distintos clones.<br />

Inicialmente se eligen los clones 37 y 31 para ser secuenciados, como representantes<br />

<strong>de</strong> los diferentes patrones <strong>de</strong> bandas observados. En ambos casos, la secuencia <strong>de</strong>l<br />

extremo 18S presentó homología con el extremo 5´ <strong>de</strong>l gen 18S <strong>de</strong> Marteilia<br />

refringens, el 100% en el caso <strong>de</strong>l clon 37 y el 98% en el caso <strong>de</strong>l clon 31. La<br />

secuencia <strong>de</strong>l extremo 28S presenta homología con secuencias <strong>de</strong> genes 28S <strong>de</strong><br />

diversos organismos.<br />

A partir <strong>de</strong> la región <strong>de</strong>l IGS secuenciada más próxima al gen 18S <strong>de</strong><br />

Marteilia, se diseña un primer interno, IN-1, para continuar secuenciando el<br />

espaciador intergénico. Para la obtención <strong>de</strong> la secuencia completa, ha sido<br />

necesario diseñar otros dos primers internos, IN-2 e IN-3, a partir <strong>de</strong> la secuencia <strong>de</strong><br />

ADN que se va conociendo.<br />

A excepción <strong>de</strong> los extremos, el resto <strong>de</strong> la secuencia no presenta homología<br />

con ninguna secuencia <strong>de</strong>positada en las bases <strong>de</strong> datos.<br />

La secuencia completa <strong>de</strong>l IGS <strong>de</strong> Marteilia refringens se está completando<br />

en estos momentos para enviar a las bases <strong>de</strong> datos internacionales.<br />

• Determinación <strong>de</strong> la especificidad <strong>de</strong>l IGS <strong>de</strong> Marteilia refringens<br />

mediante Southern-blot.<br />

La señal <strong>de</strong> hibridación aparece solamente en los ADNs <strong>de</strong> Marteilia<br />

refringens y no en los <strong>de</strong> ostra, lo cual confirma que se trata <strong>de</strong> una secuencia<br />

específica <strong>de</strong>l parásito.<br />

• Diagnóstico molecular <strong>de</strong> Marteilia refringens mediante<br />

amplificación <strong>de</strong> un fragmento <strong>de</strong> ADN parásito.<br />

A partir <strong>de</strong> la secuencia <strong>de</strong>terminada <strong>de</strong> ADN <strong>de</strong>l IGS <strong>de</strong> Marteilia, se han<br />

diseñado unos primers, MT-1 y MT-2, para comenzar a realizar ensayos <strong>de</strong><br />

diagnóstico molecular <strong>de</strong> Marteilia refringens a partir <strong>de</strong> muestras <strong>de</strong> ADN <strong>de</strong> Marteilia<br />

y muestras <strong>de</strong> ADN <strong>de</strong> glándula digestiva <strong>de</strong> ostra infectada <strong>de</strong> parásito.<br />

Se lleva a cabo un experimento <strong>de</strong> PCR en el que se amplifican muestras <strong>de</strong><br />

ADN con primers SAS1 y SS2 <strong>de</strong>l gen 18S <strong>de</strong> Marteilia refringens diseñados por Le<br />

Roux y con los primers MT-1 y MT-2. Los resultados son los siguientes:<br />

- La cantidad <strong>de</strong> ADN amplificada por PCR con los primers MT-1 y MT-2<br />

es mucho mayor que la amplificada con los primers SAS1 y SS2, lo que<br />

indica una mayor especificidad <strong>de</strong> los primeros primers a partir <strong>de</strong> la<br />

secuencia <strong>de</strong> IGS <strong>de</strong> Marteilia refringens.<br />

- Existe una alta sensibilidad <strong>de</strong> los primers MT-1 y MT-2 para <strong>de</strong>tectar<br />

cantida<strong>de</strong>s ínfimas <strong>de</strong> ADN <strong>de</strong> Marteilia refringens. Esta sensibilidad<br />

podría ser incluso mayor, <strong>de</strong>bido a que no todo es ADN puro <strong>de</strong> Marteilia<br />

refringens, sino que hay contaminación con ADN <strong>de</strong> esperma <strong>de</strong> ostra.<br />

Para <strong>de</strong>terminar el límite <strong>de</strong> <strong>de</strong>tección <strong>de</strong> los primers a partir <strong>de</strong> tejido, se<br />

realiza el siguiente experimento. Se mezcla ADN <strong>de</strong> músculo abductor <strong>de</strong> ostras<br />

sanas con cantida<strong>de</strong>s <strong>de</strong>crecientes <strong>de</strong> ADN <strong>de</strong> Marteilia refringens purificada a partir<br />

<strong>de</strong> esporontes. Con estas muestras se lleva a cabo una PCR con los primers<br />

SAS1/SS2 y con los primers MT-1/MT-2. Los resultados son los siguientes:<br />

DESARROLLO DE UN MÉTODO DE DIAGNÓSTICO MOLECULAR PARA M. REFRINGENS<br />

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