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EMPLEO DE MICROCAPSULAS EN LA ALIMENTACIÓN DE MOLUSCOS BIVALVOS.
CAPÍTULO X: C.A. GALICIA
RESUMEN DE LOS EXPERIMENTOS REALIZADOS; METODOLOGÍA,
RESULTADOS OBTENIDOS Y CONCLUSIONES.
Metodología:
Inicialmente se procede a la fabricación de las microcápsulas. Las
microcápsulas de gelatina – acacia se fabrican siguiendo el método de Langdon y
Waldock con las modificaciones descritas por Rodríguez y cuya técnica es puesta a
punto en el Centro de Cultivos Marinos de Ribadeo. Para poder demostrar la
ingestión y digestión de éstas microcápsulas, se fabrican y se marcan con un
colorante de cubierta. Así mismo, para comprobar su asimilación, se fabrican unas
microcápsulas por el método mencionado anteriormente pero con ácido oleico y ácido
araquidónico deuterado en las proporciones 90:10.
Para la fabricación de microcápsulas de pared de proteína se sigue el método
de Langdon en el Centro de Experimentación en Acuicultura de Couso.
Para testar las microcápsulas se realizan cuatro experiencias con larvas de
almeja fina (Ruditapes decussata) y almeja babosa (Tapes pullastra) en la planta del
Centro de Cultivos Marinos de Ribadeo.
La prueba 1, prueba con una duración de 24 horas, se pretende demostrar la
asimilación de las microcápsulas. Se utilizan dos matraces de cristal de 6 l de
capacidad en los que se introducen 30.000 larvas de almeja babosa. A las larvas del
primer matraz se les somete a ayuno total durante 24 horas mientras que a las del
segundo matraz, se les adicionan 60 equivalentes de microcápsulas, dejándolas 12
horas con alimentación y las restantes 12 horas en ayunas. Pasadas las 24 horas, se
recogen las larvas de ambos matraces para ser analizadas.
La prueba 2 es una prueba de verificación de la asimilación consistente en
dos cultivos de larvas de almeja babosa. Se parte de larvas de almeja de dos puestas
diferentes, repartiendo cada puesta en dos tanques de 150 l de capacidad,
conteniendo cada tanque 600.000 larvas. Un tanque de cada puesta se somete a una
alimentación normal de 80 equivalentes de mezcla de microalgas y en el otro, las
larvas son alimentadas con 75 equivalentes de esta mezcla, más 5 equivalentes de
las microcápsulas. La prueba dura 7 días y se toman muestras para controlar su talla
y análisis de ácidos grasos.
En la prueba 3, que tiene una duración de 51 días, se lleva a cabo un
desarrollo larvario y postlarvario de almeja babosa en tanques de 250 l. Las larvas se
comienzan a alimentar a las 24 horas con 40 equivalentes de Isochrysis sp. y Paulova
lutheri (1:1). A los 6 días comienza la experiencia con tres dietas diferentes por lo que
3.412.000 larvas se dividen en 6 tanques de 250 l. Dos de los tanques son
alimentados con la dieta estándar, otros dos con la mitad de ésta y los dos restantes
con la mitad del fitoplancton suplementada con las microcápsulas de aceite de hígado
de bacalao, en una proporción de 1/20 del fitoplancton estándar. Se toman muestras
para controlar tamaños, pesos, mortalidades, análisis de la composición bioquímica
mayoritaria y analítica de ácidos grasos.
En la prueba 4 se lleva a cabo la misma experiencia que en la prueba 3 pero
en este caso utilizando almeja fina. A los 8 días se reparten 7.635.000 larvas en 6
tanques de 500 litros. El seguimiento se realiza durante 63 días, la única diferencia
con al prueba 3 es que se aumenta la proporción de la dieta con microcápsulas a ¼
de la ración normal de fitoplancton. Se toman muestras para controlar tamaños,
pesos, mortalidades y para hacer analíticas bioquímicas y de ácidos grasos.
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