Sonderheft 255 Special Issue - Johann Heinrich von Thünen-Institut

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1982) vermutet, dass die Temperaturschwelle für den
Flug bei 20 – 25 °C liegt, die Flugdistanz beträgt nur
einige Meter.
Zwischen Ende März und Ende April verlassen die
Käfer Ihre Winterquartiere und beginnen bald mit der
Kopulation (Abb. 1). Die Weibchen legen dann die
hellgelb gefärbten Eier in Gruppen von 30 – 40 Stück
auf die Unterseite der Ampferblätter ab (Engel 1956),
wobei ein Weibchen laut Renner (1970, nach Scheiwiller
und Benz 1987) bis zu 1.200 Eier produzieren
kann. Ein bis zwei Wochen später schlüpfen die Junglarven
(Engel 1956), die noch drei an ihrer Größe
unterscheidbare Larvalstadien durchlaufen. Sie sind
schwarz gefärbt, beborstet und besitzen laterale Tuberkel,
aus denen sie ein intraspezifisch wirksames,
abschreckendes Sekret ausscheiden können (Schindek
und Hilker 1996). Die Junglarven fressen leicht schabend
an der Blattunterseite. Die späteren Entwicklungsstadien
zeigen zuerst einen Fensterfraß, der dann
in den charakteristischen Lochfraß übergeht. Nach ca.
drei bis vier Wochen vergraben sich die Larven im
letzten Stadium neben der Fraßpflanze 2 – 5 cm tief in
den Boden und verpuppen sich. In unseren Breiten
werden meist 3 Generationen ausgebildet. Die Jungkäfer
der 3. Generation bereiten sich im Spätherbst
durch intensiven Fraß auf die Überwinterung vor,
vergraben sich dann 3 – 8, teilweise bis zu 30 cm tief
neben der Fraßpflanze in den Boden und gehen in die
Diapause (Engel 1956). Diese wird laut Benz (1982)
durch Kurztag und Frost induziert. Der selbe Autor
gibt eine Lebensdauer der adulten Käfer von 30 – 40
Tagen, und eine Zeitspanne für die Entwicklung einer
Generation (Ei zu Ei) von 40 – 60 Tagen an.
G. viridula ist ausgesprochen oligophag. Sein Fraßspektrum
umfasst vor allem Polygonaceae. Die primären
Wirtspflanzen sind Rumex-Arten, vorwiegend
R. obtusifolius und R. alpinus. Sie sind für die Entwicklung
des Käfers am besten geeignet (Chevin
1968, nach Herndl-Silmbrod 1989).
Da die Larven des Käfers bei hoher Dichte ganze
Ampferpflanzen skelettieren können, bietet sich die
Einbindung des Ampferblattkäfers in ein Konzept zur
biologischen Regulierung des Stumpfblättrigen Wiesenampfers
an.
In einer am Ludwig Boltzmann-Institut in der Saison
2000 durchgeführten Diplomarbeit (Hann 2001) und
in den daran anschließenden Untersuchungen wurde
folgenden Fragestellungen nachgegangen: Kann der
Käfer gefördert werden durch 1.) einen schonenden
Mahdrhythmus, d. h. die Flächen werden dann gemäht,
wenn die Larven zur Verpuppung in der Erde
vergraben sind und/oder 2.) ungemähte und ungedüngte
Teilflächen als Nahrungsressourcen, Brutherde
und Überwinterungsorte. Weiters wurde untersucht,
ob der Käferfraß Auswirkungen auf die Ampferpflanzen
und die Ampferdeckung zeigte.
Material und Methoden
Der Versuch wurde im Frühjahr 2000 in einem homogen
verampferten Bereich einer Mähweide der
Abbildung 2:
Parzellenanlage am Garnberg (Landwirtschaftliche
Fachschule Hohenlehen, Ybbstal, Niederösterreich),
ca. 600 m Seehöhe, graue Parzellen: zur Untersuchung
von G. viridula, weiße Parzellen: pflanzenbauliche
Methoden
Abbildung 3:
oben: Richtungsfallen, schwarz = Herbst 2000, grau =
Frühjahr 2001; unten: Schlupfkästen, Frühjahr 2001