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M. USCOLA et al. Efectividad de la fertilización foliar nitrogenada como herramienta para incrementar<br />

la concentración de nitrógeno en brinzales de Pinus halepensis Mill. y Quercus ilex L.<br />

en coníferas boreales. Aunque los valores<br />

de concentración de N testadas en estudios<br />

de deposición son más bajas que las<br />

empleada en fertilización foliar<br />

(ADRIAENSSENS et al., 2010). Los<br />

estudios sobre fertilización foliar en<br />

especies forestales mediterráneas son muy<br />

escasos, existiendo alguna experiencia con<br />

el olivo (ver Klein & Weinbaum 1985).<br />

En este estudio se compara la eficacia,<br />

medida como la absorción de N y el<br />

incremento de la concentración de N en la<br />

planta, así como la eficiencia de la<br />

fertilización foliar de cuatro fuentes de N:<br />

urea, glicina, NH4 + y NO3 - , en dos especies:<br />

Pinus halepensis Mill. (pino carrasco) y<br />

Quercus ilex L. ssp. ballota (Desf) Samp.<br />

(encina). Ambas especies son ampliamente<br />

cultivadas en los viveros forestales<br />

españoles ya que son muy utilizadas en<br />

reforestación y son especies de estrategias<br />

ecológicas y atributos funcionales muy<br />

contrastados.<br />

MATERIAL Y MÉTODOS<br />

Material vegetal, diseño experimental y<br />

marcaje con 15 N y 13 C.<br />

Los contenedores individualizados de<br />

brinzales de un año se sellaron con plástico<br />

para evitar la posible contaminación del<br />

sustrato. Las partes aéreas se fumigaron con<br />

soluciones 40mM de N de cuatro fuentes de<br />

N: amonio (NH4 + ), nitrato (NO3 - ), urea y<br />

glicina. Se prepararon dos soluciones por<br />

cada fuente de N con agua desioinizada. En<br />

la primera solución el 15 N estaba en<br />

abundancia natural (soluciones no<br />

marcadas), mientras que la segunda, estaba<br />

enriquecida en 15 N (soluciones marcadas).<br />

En el caso del NH4 + y NO3 - se utilizó<br />

sulfato amónico- 15 N y nitrato- 15 N potásico<br />

con una abundancia de 15 N del 60 átomo%,<br />

mientras en urea (SIGMA Aldrich Co,<br />

Milwaukee, USA) y en glicina fue del 98<br />

átomo% (Cambridge Isotope Laboratories,<br />

Andover, USA).<br />

Por cada especie y fuente de N se<br />

usaron cuatro y doce plantas para las<br />

122<br />

soluciones no marcadas (plantas no<br />

marcadas) y marcadas (plantas marcadas),<br />

respectivamente. La fumigación se realizó<br />

tres veces al día durante dos días. Antes de<br />

la fumigación se cosecharon cuatro plantas<br />

de cada especie (plantas control).<br />

Cuantificación de la cantidad de solución<br />

fertilizante aplicada.<br />

Durante la fumigación se colocó un<br />

papel de filtro rodeando la planta y su base.<br />

El volumen de solución aplicada (Va), se<br />

calculó como la diferencia de peso del<br />

fumigador antes (Pif) y después de cada<br />

fumigación (Pff). El volumen de la solución<br />

aplicada pero no retenida en la parte aérea<br />

(Vnr) se midió como la diferencia entre el<br />

peso del papel filtro después (Pfp) y antes de<br />

cada fumigación (Pip). El volumen de la<br />

solución retenida por la parte aérea de la<br />

planta (Vr) se calculó según la siguiente<br />

ecuación:<br />

V V V<br />

P P P P (ml) [1]<br />

r<br />

a<br />

nr<br />

<br />

if<br />

ff<br />

Procesado de plantas y análisis isotópico.<br />

Las partes aéreas se separaron de las<br />

raíces cortando por el punto de sellado con<br />

el plástico. Los cepellones se congelaron<br />

hasta su procesado. En las partes aéreas se<br />

midió la transpiración residual (TR) como<br />

un estimador de la permeabilidad de la<br />

cutícula, siguiendo la metodología descrita<br />

en VILLAR-SALVADOR et al. (2004). A<br />

continuación, la superficie foliar de cada<br />

planta se midió con una analizador de<br />

imágenes (DIAS, Delta-T Devices LTD,<br />

Cambridge, UK). Los cepellones, tras<br />

descongelarse, se lavaron con agua de grifo<br />

para eliminar el sustrato. Posteriormente,<br />

tanto las partes aéreas como las raíces se<br />

lavaron con agua destilada, se secaron<br />

durante 48 h a 60 ºC y se determinó su<br />

masa. Ambos tejidos fueron molidos por<br />

separado en un molino de bolas (PM100,<br />

Retsch, Haan, Germany) y se encapsularon<br />

para analizar la concentración de N y la<br />

abundancia isotópica de 15 N (CF-IRMS<br />

Isochrom Micromass, Inglaterra).<br />

fp<br />

ip

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