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DIAZ_CESAR_1167D.pdf

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amino terminal de las proteínas (pKa= 8,0) y el grupo r.-amino de las lisinas<br />

(pKa=1 0,5). Para no marcar las lisinas (que generalmente se ubican en la<br />

superficie de las proteínas) se debe usar un amortiguador más cercano al pH<br />

neutro, el cual permite marcar específicamente el extremo amino terminal. Esto<br />

se hizo con el amortiguador HEPES 50 mM (pH 7,0), el cual se usó también<br />

para la purificación y todos los ensayos de polimerización. Además del pH del<br />

amortiguador, también se consideró la relación molar sonda/proteína de la<br />

reacción de conjugación. Se hicieron varios ensayos de marcaje a distintas<br />

relaciones molares sonda: proteína. Una relación molar sonda:proteína de 10:1<br />

permitió la obtención de un DOL de 1:1. Para la cuantificación precisa de las<br />

sondas (TAMRA o Alexa Fluor 488), se disolvió aproximadamente 0,5 mg de<br />

cada una en 50 ¡JL de DMSO. Se tomó 1 ¡.¡L y se hizo una dilución de 1:10.000<br />

en el amortiguador HEPES 50 mM (pH 7,0) y se calculó la concentración de<br />

cada una de las sondas utilizando los valores de la absorbancia máxima y el<br />

coeficiente de extinción indicados por el fabricante (lnvitrogen; TAMRA 555<br />

nm/65.000 M- 1 cm- 1 ; Alexa Fluor 488 519 nm/ 73.000 M- 1 cm-\ Se prepararon<br />

150 ¡.¡L de una solución de BtubAJB 200 ¡.¡M en amortiguador HEPES 50 mM<br />

(pH 7,0) y se le adicionó la sonda previamente cuantificada a una<br />

concentración final de 2 mM . La mezcla se incubó en hielo por 1 h con<br />

agitación ocasional suave y en oscuridad. Después se separó la proteína<br />

marcada de la sonda libre con dos columnas "Micro Bio-Spin" (Bio-Rad;<br />

previamente equilibradas con el amortiguador HEPES 50 mM (pH 7,0)) y se le<br />

adicionó KCI 200 mM y MgCI2 5 mM . Se incubó a temperatura ambiente por 1 O<br />

min y en oscuridad. Para seleccionar la proteína marcada competente para<br />

polimerizar, se adicionó GTP 1 mM y se ultracentrifugó a 100.000 x g por 15<br />

min a 25°C. El precipitado se suspendió en amortiguador HEPES 50 mM (pH<br />

7,0), se incubó en hielo por 20 min y en oscuridad y se ultracentrifugó a<br />

100.000 x g por 15 min a 4 oc para eliminar los agregados. La proteína<br />

marcada se microdializó por 6 horas en oscuridad a 4°C contra 100 ml de<br />

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