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JINC – 6ª Jornada de Iniciação Científica EmbrapaSIPEX – II Seminário de Pesquisa e Extensão da UnC25 de outubro de 2012 – Concórdia/SCMACROINVERTEBRADOS BENTÔNICOS COMO BIOINDICADORES DA QUALIDADE DAÁGUA DO LAJEADO SALVADOR CONCÓRDIA - SCSilveira, S.¹*; Mass, E. P.²; Araldi – Favassa, C. T. 3 ; Oliveira, A. G. P. de 3¹ Graduanda em Ciências Biológicas pela Universidade do Contestado, Campus Concórdia, Bolsista CNPQ/IC naEmbrapa Suínos e Aves. E-mail: sa-se-si@hotmail.com² Estudante da Escola de Educação Básica Professor Olavo Cecco Rigon3Professora do Curso de Ciências Biológicas da Universidade do Contestado, Campus ConcórdiaPalavras-chave: bioindicadores, índices biológicos, macroinvertebrados bentônicos.IntroduçãoO crescimento populacional, juntamente com o aceleradodesenvolvimento econômico vem provocando uma sériede problemas aos recursos naturais, em especial à água.Pois, acarretam em alterações ecológicas e químicas queconduzem o desequilíbrio da flora e fauna. Como porexemplo, a diminuição no número de indivíduos e aextinção de espécies. Medidas de monitoramento devemser elaboradas e empregadas para avaliar a qualidade daágua, verificando e constatando as fontes poluidoras e,posteriormente, estratégias conservacionistas. Um dosmétodos mais eficazes é a utilização de bioindicadores,como os macroinvertebrados bentônicos (4). O objetivodeste trabalho foi conhecer a composição da comunidadede macroinvertebrados bentônicos do Lajeado Salvador,Concórdia, SC.Materiais e MétodosOs invertebrados foram coletados em três pontos, emjulho de 2012, com o coletor tipo surber, e conduzidos aolaboratório para triagem e identificação, com auxílio dechaves-dicotômicas. Segundo metodologia descrita porSilveira, Queiroz e Boeira (5). Foram calculados osvalores de riqueza, abundância, similaridade pelo índicede Jaccard, e diversidade pelo índice de Shannon-Wiener,de cada ponto.Resultados e DiscussõesAo todo foram coletados doze organismos pertencentes atrês táxons. Os resultados sobre a composição dacomunidade de macroinvertebrados bentônicos nos 3pontos, bem como os valores da abundância, riqueza eíndice de Shannon- Wiener encontram-se disponíveis natabela 1 e na figura 1. Os organismos da famíliachironomidae são chamados de resistentes, porque sãotolerantes à poluição. Os organismos da ordemtrichoptera são ditos sensíveis, pois são intolerantes àpoluição. As planárias (filo platelmintes, classe turbelária)são sensíveis tanto à poluição orgânica, quanto asmodificações estruturais do ambiente (3). O ponto 1apresentou maior abundância e riqueza. Sendo que foi oúnico ponto que apresentou valor no índice de Shannon –Wiener. Nenhum dos pontos correlacionados apresentousimilaridade. Como o ponto 1 apresentou valor no índicede Shannon-Wiener inferior a 1,8, é dito como ambientede baixa diversidade (4).Tabela 1: Composição de macroinvertebrados bentônicosPonto 1 Ponto 2 Ponto 3Filo Platelmintes. ClasseTurbellaria6 0 0Ordem Trichoptera1 0 0Ordem Diptera. FamíliaChironomidae 0 0 5Fig. 1. Abundância, riqueza, diversidadeA pluviosidade (92 mm) (2) que ocorreu durante os 10dias que antecederam a coleta provocou o fenômenochamado de drift, que é responsável pelo carreamentodos invertebrados, resultando em um decréscimo nadiversidade e na abundância (1).ConclusõesOs dados obtidos na pesquisa não foram suficientes parafazer uma análise da qualidade da água, também não sepode afirmar que as atividades antrópicas desenvolvidasna área pesquisada influenciam na diversidade demacroinvertebrados bentônicos, pois a quantidade dechuva nos dias que antecederam a coleta possivelmentecausou a diminuição drástica do número de organismos.Este trabalho se caracteriza como um estudo preliminar.Para obtenção de melhores resultados torna-senecessário um maior número de coletas e em estaçõesdiferentes.Referências1. CARVALHO, E. M. DE; UIEDA, V. S. Colonização pormacroinvertebrados bentônicos em substrato artificiale natural em um riacho da serra da Itatinga, SãoPaulo, Brasil. Revista brasileira de zoologia. v. 2. n.21. p. 287 – 293, jun 2004.2. EMBRAPA. Dados climatológicos obtidos nomunicípio de Concórdia, SC, no mês de julho de2012. Disponível em:http://www.cnpsa.embrapa.br/meteor>. Acesso em 12ago 2012.3. GOULART, M. D. C; CALLISTO, M. Bioindicadores dequalidade de água como ferramenta em estudos deimpacto ambiental. Revista da FAPAM, n. 2, 2003.4. HEPP, L. U. Fauna de invertebrados aquáticos nabacia hidrográfica do rio Jacutinga, Jacutinga –RS. 2005. f. 91. Dissertação (mestrado em ciênciasbiológicas) – curso de pós-graduação em ciênciasbiológicas. UFSM. Santa Maria, RS.5. SILVEIRA, M. P; QUEIROZ, J. F. DE; BOEIRA, R. C.Protocolo de coleta e preparação de amostras demacroinvertebrados bentônicos em riachos.Jaguariúna, SP: Embrapa Meio Ambiente,Comunicado técnico 19, 2004.26
JINC – 6ª Jornada de Iniciação Científica EmbrapaSIPEX – II Seminário de Pesquisa e Extensão da UnC25 de outubro de 2012 – Concórdia/SCAVALIAÇÃO DE UM TESTE DE IMUNOCROMATOGRAFIA PARA A DETECÇÃO DO VÍRUSINFLUENZA A EM SUÍNOSSilveira, S.¹*; Gava, D.²; Schaefer, R.²; Schiochet, M. F.²; Simon, N.²; Zanella, J. R. C.²¹Graduanda em Ciências Biológicas pela Universidade do Contestado, Campus Concórdia, Bolsista CNPQ/IC naEmbrapa Suínos e Aves. E-mail: sa-se-si@hotmail.com²Embrapa Suínos e AvesPalavras-chave: influenza suína, RT-PCR em tempo real, teste de imunocromatografia.IntroduçãoO vírus influenza A em suínos (SIV) causa uma doençarespiratória, infecciosa e aguda, a influenza suína (SI) (8).A SI cursa com alta morbidade (até 100%) e baixamortalidade (cerca de 2%), tem início súbito edisseminação rápida em um rebanho não imune. Emsurtos típicos, os animais apresentam febre, tosse,espirros, dispneia e secreção nasal seromucosa. Atransmissão viral acontece diretamente de animal paraanimal, através de gotículas ou aerossóis que atingem avia nasofaríngea (4). O uso de métodos de diagnóstico acampo, que sejam sensíveis, específicos, rápidos, de fácilexecução e interpretação, traz benefícios para a tomadade decisão sobre o tratamento dos suínos e para ocontrole da infecção. Muitos testes de diagnóstico in vitro,que podem ser aplicados a campo, estão sendo utilizadospara a detecção do SIV, e baseiam-se no princípio deimunocromatografia, no qual a reação antígeno-anticorpoé concentrada em uma única fase sólida, mantida atemperatura ambiente (1,2). O objetivo deste trabalho foi aavaliação de um teste de imunocromatografia para adetecção do vírus influenza A em suínos.Materiais e MétodosEm uma granja com sinais clínicos típicos de SI foramcolhidas, com o uso de suabes nasais, 20 amostras desecreção nasal de suínos com 35 a 58 dias de vida. Asamostras foram testadas na granja pelo teste deimunocromatografia e, após o teste, as amostras foramcoletadas em meio de transporte (MEM) e enviadas aolaboratório de virologia da Embrapa Suínos e Aves. Nolaboratório, as amostras foram testadas por qRT-PCR(transcrição reversa - reação em cadeia da polimerase emtempo-real quantitativa) para detecção do vírus influenzaA. As amostras positivas por qRT-PCR foram inoculadasem ovos embrionados de galinhas SPF (livres depatógenos específicos) para isolamento viral.Resultados e DiscussõesNenhuma amostra foi positiva pelo teste deimunocromatografia. Porém, duas das 20 amostras forampositivas por qRTPCR e uma destas foi positiva noisolamento viral (tabela 1). Estes resultados discordam dapesquisa realizada pelos fabricantes do kit de diagnósticorápido por imunocromatografia, a qual relata uma altasensibilidade (93,5%) e alta especificidade (100%) domesmo (6). Alguns estudos mostram que testes deimunocromatografia são menos sensíveis em comparaçãocom a RT-PCR (1), entretanto, outros trabalhos relatamuma alta sensibilidade destes testes (3,7). A sensibilidadedos testes de imunocromatografia pode variar de acordocom a carga viral presente nas amostras testadas. Ouseja, caso as amostras tenham sido colhidas no final dafase aguda da infecção, o resultado do teste pode ser umfalso-negativo, em função da baixa carga viral presente naamostra, mas o ácido nucleico viral ainda pode serdetectado por RT-PCR (5). Entretanto, das duas amostraspositivas na qRT-PCR, uma amostra foi isolada em ovos,e não detectada pelo teste de imunocromatografia,sugerindo uma baixa sensibilidade do teste ou que esteteste não detecte amostras de SIV que circulam no Brasil,uma vez que este kit de diagnóstico foi produzido etestado com amostras de vírus influenza que circulam naEuropa (6).Tabela 1. Resultadospositivo / totalimunocromatografia 0/20qRT-PCR influenza A 2/20isolamento viral 1/2ConclusõesO teste de imunocromatografia não detectou nenhumaamostra positiva para SIV, porém, duas amostras forampositivas por qRT-PCR e uma foi isolada em ovosembrionados. Apesar de terem sido avaliadas umpequeno número de amostras de suínos, o teste foiconsiderado pouco sensível uma vez que não identificoucomo positivas amostras que apresentavam uma altacarga viral. Deve-se acrescentar ainda que para o melhordesempenho de testes de diagnóstico para SIV, assecreções nasais de suínos devem ser colhidas durante afase aguda da doença, nos primeiros 4 a 6 dias deinfecção, pois, consiste na fase de maior excreção viral(9).Referências1. AL JOHANI, S. M et al. Validity of two rapid point of careinfluenza tests and direct fluorescence assay in comparisonof real time PCR for swine of origin influenza virus. Journalof Infection and Public Health, v. 4, p. 7 – 11, 2011.2. CHAN, K. H et al. Analytical sensitivity of rapid influenzaantigen detection tests for swine-origin influenza virus(H1N1). Journal of Clinical Virology, v. 45, p. 205 – 207,2009.3. CHEN, Y et al. A rapid test for the detection of influenza Avirus including pandemic influenza A/H1N1 2009. Journal ofClinical Virology, v. 167, p. 100 – 102, 2010.4. FLORES, E. F. Virologia veterinária. Santa Maria, RS:UFSM, 2007.5. GHEBREMEDHIN, B et al. Comparison of the performance ofthe rapid antigen detection actim influenza A&B test and RT-PCR in different respiratory specimens. Journal of MedicalMicrobiology, v. 58, p. 365 – 370, 2009.6. LAMICHHANE, C et al. Performance of the FLuDETECT®antigen test kit for rapid on-farm detection of swineinfluenza virus. In: INTERNATIONAL PIG VETERINARYSOCIETY CONGRESS, 22 nd , 2012, Jeju, Korea.7. MORENO, D. N. S et al. Comparison of two diagnosticmethods for the detection of the porcine influenza virus.Veterinaria México, v. 41, n. 1, p. 45 – 58, 2010.8. REETH, K. V et al. Influenza virus. In: ZIMMERMAN, J. J etal. Diseases of swine. 10. ed. Ames, Iowa, Estados Unidos:John Wiley & Sons, 2012. cap. 40. p. 557–571.9. SWENSON, S. L et al. A comparison of diagnostic assays forthe detection of type A swine influenza virus from nasalswabs and lungs. Journal of Veterinary DiagnosticInvestigation, v. 13, p. 36–41, 2001.27
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