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Dokument 1.pdf - OPUS - Universität Würzburg

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5 Methoden<br />

mit 0,1 mg Fluorescein-Isothiocyanat (FITC) 15 min bei 37 °C angefärbt. Es folgten<br />

mindestens 5 Waschschritte mit weißem RPMI-Medium (2000 × g, 2 min), bis keine<br />

gelbliche Färbung des Mediums durch FITC mehr erkennbar war. Je 2 × 10 6 gefärbte<br />

Keimschläuche wurden in 50 µl farblosem RPMI-Medium mit RAD (10 nM) bzw. mit EtOH<br />

(10 -4 % ig) als Kontrolle 2 h bei 37 °C inkubiert. Durch Zentrifugation (5 min, 120 rpm) in<br />

einer Zytospinzentrifuge wurden die Keimschläuche auf Objektträger gebracht und sofort mit<br />

3,7 % Formaldehyd 20 - 30 min fixiert. Die Fixierlösung wurde mit 1 × PBS abgewaschen.<br />

Nachdem der Objektträger an der Luft getrocknet war, wurde mit einem Tropfen Fluoprep ein<br />

Deckglas fixiert. Am nächsten Tag folgte die Analyse am Fluoreszenzmikroskop (Zeiss, D).<br />

Es wurde der Durchlicht- und der GFP-Kanal aufgenommen. Da die anfängliche Länge der<br />

Keimschläuche grün fluoreszierte, der weitergewachsene Teil hingegen nur im Durchlicht<br />

erschien, konnte die Länge des gewachsenen Teils mittels AxioVision Software vermessen<br />

werden. Pro Ansatz wurden 80 - 100 Keimschläuche vermessen. Das Wachstum wurde mit<br />

folgender Formel ermittelt:<br />

Wachstum [%] = Länge (ungefärbter Teil) × 100 / Länge (fluoreszierender Teil)<br />

5.3 Primärzellen<br />

Bei der gesamten Aufreinigung von Zellen wurde immer mit gekühlten Lösungen gearbeitet.<br />

5.3.1 Isolation von PBMCs<br />

Zur Isolation von peripheren mononukleären Blutzellen (PBMCs, peripheral blood<br />

mononuclear cells) wurden Leukozyten-Reduktions-System Kammern (LRSCs,<br />

leukoreduction system chambers) (Dietz et al., 2006), die ein Leukozytenkonzentrat von<br />

freiwilligen, gesunden, humanen Spendern enthielten, aus der Transfusionsmedizin des<br />

Uniklinikums <strong>Würzburg</strong> verwendet. Zu dem 10 ml Konzentrat wurden 90 ml HBSS (+ 2 mM<br />

EDTA + 1 % FCS) gegeben und gemischt. Jeweils 25 ml der Lösung wurden langsam auf<br />

20 ml des Kohlenhydrat-Polymer FICOLL ® (ρ = 1,077 g / ml) geschichtet und für 20 min bei<br />

800 × g ohne Bremse zentrifugiert. Diese Dichtegradientenzentrifugation bewirkte, dass sich<br />

die mononukleären Zellen, die sich hauptsächlich aus Lymphozyten und Monozyten<br />

zusammensetzten, in der Interphase sammelten. Die Erythrozyten und die polymorphkernigen<br />

Leukozyten mit ihrer höheren Dichte hingegen setzten sich unten ab. Mit Hilfe einer<br />

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