TESIS COMPLETA.pdf - El Instituto EspaÃ±ol de OceanografÃa

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Capítulo 3 fitoplancton, con agitación, aireación forzada y una temperatura constante. Los reactores de menor volumen se mantuvieron en una cámara termostatizada (±0.2ºC), con saturación de O 2 insuflando aire a través de una pipeta Pasteur mediante una bomba electrosoplante y se homogeneizaron continuamente con un agitador magnético. En la figura 3.3a se muestra un esquema de la disposición de estos reactores. La agitación del microcosmos (Fig. 3.3b) se realizó utilizando tres bombas sumergibles que proporcionaban un alto caudal (17 L·minuto -1 ) y que simultáneamente insuflaban aire, manteniendo la disolución saturada en oxígeno. La temperatura en este caso se mantuvo constante con una resistencia sumergible controlada por un termopar. La precisión en el control de la temperatura fue de ±1ºC. La concentración inicial de LAS en estos ensayos previos fue de 500 µg·L -1 . El uso de un microcosmos de gran volumen tiene ventajas claras para la simulación de condiciones ambientales, ya que permite muestrear mayores volúmenes (250mL) y reducir, por tanto, el límite de detección, así como el efecto de confinamiento sobre los microorganismos. Sin embargo a pesar de los esfuerzos para homogeneizar el microcosmos, se constató la imposibilidad –en las condiciones ensayadas- de obtener muestras, de forma reproducible, cuya concentración de LAS fuera representativa de todo el volumen. Además también se detectaron pérdidas importantes por adsorción en las paredes del recipiente. Este hecho se ilustra en la figura 3.4, donde se muestra la evolución de la concentración de C 12 LAS en un experimento con inóculo y su control correspondiente, en un ensayo realizado en el microcosmos. Estos datos corresponden al ensayo A, que se describirá en el siguiente apartado de este capítulo. Como se puede apreciar en la figura 3.4, la reducción de la concentración del homólogo de LAS después de unas horas en el control es significativa (>20%), y se han detectado variaciones anómalas en estos datos con el tiempo, lo que indica que las muestras tomadas de este reactor no son representativas. Estas pérdidas por adsorción se produjeron también en el erlenmeyer de plástico (20% adsorción del LAS añadido). Por este motivo, se decidió realizar de manera sistemática los bioensayos en reactores de vidrio de 3L de capacidad. En ellos las pérdidas de LAS por adsorción fueron inferiores al 10% en todos los casos. 76
Biodegradación del LAS 25.0 Bomba Elecrosoplante Agitador magnético Bomba sumergible Resistencia sumergible A : Reactor con 3L de capacidad en cámara termostatizada B: Microcosmos, reactor con 120L de capacidad Figura 3.3. Esquema de los reactores comparados en los ensayos previos de biodegradación. (a) Microcosmos (120L de capacidad) de plástico. (b) Reactor de menor volumen correspondiente al dispositivo utilizado tanto con el erlenmeyer de plástico (2.5L de capacidad) y el reactor de vidrio (3L). 500 [C 12 LAS] (µg·L -1 ) 250 0 0 70 140 Tiempo (h) Figura 3.4. Variación de la concentración de C 12 LAS con el tiempo en el ensayo de degradación A (•) y en su control (). Este ensayo se realizó en el microcosmos, y sus principales características se describen en el siguiente apartado de la memoria. 77
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