Identifikation und Charakterisierung - OPUS - Universität Würzburg
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Inhaltsverzeichnis<br />
2.6 Gelelektrophoretische Analyse von DNA 33<br />
2.6.1 Analyse von DNA in Agarosegelen 33<br />
2.6.2 DNA-Größenstandards 34<br />
2.6.3 Isolierung von DNA-Fragmenten aus Agarosegelen 34<br />
2.6.4 Reinigung von DNA-Fragmenten 34<br />
2.7 Polymerase-Ketten-Reaktion (PCR) 35<br />
2.7.1 Amplifizierung von DNA-Sequenzen über PCR 35<br />
2.7.2 In-vitro-Mutagenese über PCR 36<br />
2.7.3 Einzelzell-RT-PCR 36<br />
2.8 Klonierung 38<br />
2.8.1 Schneiden der DNA mit Restriktionsendodukleasen 38<br />
2.8.2 Ligation von DNA-Molekülen 39<br />
2.9 Sequenzierung 40<br />
2.10 CDR3-Spectratyping 41<br />
3. Isolation von Einzelzellen aus Gefrierschnitten 43<br />
3.1 Anfertigen von Gefrierschnitten 43<br />
3.2 Aufbringen von Zellen auf Objektträger mittels Cytospin 43<br />
3.3 Immunhistologie 44<br />
3.3.1 Alkalische Phosphatase Färbung (AP-Färbung) 44<br />
3.3.2 Immunfluoreszenz-Färbung 44<br />
3.4 Lasermikrodissektion 46<br />
4. Zellbiologische Methoden 46<br />
4.1 Kultivierung von Suspensionszellen 46<br />
4.2 Kultivierung von adhärent wachsenden Zellen 47<br />
4.3 Bestimmung der Zellzahl 47<br />
4.4 Einfrieren <strong>und</strong> Auftauen von Zellen 47<br />
4.5 Transfektion von Zellen 48<br />
4.5.1 Transfektion von Zellen durch Elektroporation 48<br />
4.5.2 Transfektion von Zellen mit Lipofectamin 49<br />
4.5.3 Selektion der transfizierten Zellen 49<br />
4.6 Transduktion von Zellen mit Hilfe von Retroviren 50<br />
4.7 FACS-Analyse 50<br />
4.8 Aktivierung der Transfektanten 51<br />
4.8.1 Physiologische Aktivierung der Transfektanten 51<br />
III