Identifikation und Charakterisierung - OPUS - Universität Würzburg
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III. Ergebnisse<br />
Sal I Bgl II Bam HI<br />
Vβ NDN Jβ Cβ<br />
Abb. 31: Schematische Darstellung des Subklonierungsvektors pBRdel<br />
Über die Sal I- <strong>und</strong> Bgl II-Schnittstellen konnten die rekombinierten V-NDN-J-DNA-Sequenzen der<br />
β-Ketten ausgetauscht <strong>und</strong> dabei in pBRdel mit der Sequenz des konstanten Bereichs zu vollständig<br />
kodierenden TZR-Ketten verb<strong>und</strong>en werden.<br />
Anschließend transformierten wir den Vektor mit dem Vβ1-TZR-Fragment mittels<br />
Elektroporation (II.2.2.2) in DH5α-Bakterienzellen, isolierten am folgenden Tag Kolonien von<br />
der Agarplatte <strong>und</strong> detektierten positive Klone mittels PCR-Screening. Zwei Klone wurden<br />
ausgewählt <strong>und</strong> nochmals durch Sequenzierung überprüft.<br />
Nun konnte die komplette TZR-β-Kette aus dem Zwischenvektor pBRdel mittels SalI-BamHI-<br />
Restriktionsverdau herausgeschnitten <strong>und</strong> in den ebenfalls SalI-BamHI geschnittenen<br />
Zielvektor pRSV5neo hineinkloniert werden (Abb. 32).<br />
Sal I Bgl II Bam HI<br />
Vβ NDN Jβ Cβ<br />
Abb. 32: Schematische Darstellung des Expressionsvektors pRSV5neo<br />
Aus dem Subklonierungsvektor pBRdel wurden die vollständigen TZR-DNA-Sequenzen über die<br />
Schnittstellen Sal I <strong>und</strong> Bam HI herausgeschnitten <strong>und</strong> in den Expressionsvektor pRSV5neo umkloniert.<br />
Wir analysierten die erhaltenen Klone durch PCR-Screening <strong>und</strong> überprüften jeweils zwei<br />
ausgewählte Klone durch Sequenzierung.<br />
Nach Bestätigung der Sequenz bereiteten wir die Kette für die Transfektion in die Maus-<br />
Hybridomzelllinie vor.<br />
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