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THESE UNIQUE El Hassane Kéhien-Piho TOU - Nutridev

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Matériels et méthodes<br />

(1988). Les cendres totales ont été déterminées par minéralisation au four à 530°C. Les<br />

glucides totaux ont été calculés par différence. La valeur énergétique théorique de la bouillie a<br />

été calculée en prenant 4 kcal/g comme coefficient de conversion pour les protéines et les<br />

glucides et 9 kcal/g comme coefficients de conversion pour les lipides.<br />

III.1.6. Dosage des phytates par HPIC<br />

Principe<br />

La chromatographie ionique à haute performance (HPIC) est une technique de dosage des<br />

ions par couplage échange d’ions et détection conductimétrique. La séparation se fait sur<br />

colonne échangeuse d’anions ou cations. L’éluant est généralement de composition chimique<br />

simple : acide méta-sulfonique pour les cations, hydroxyde de sodium pour les anions. Un<br />

module de suppression ou de neutralisation, neutralise chimiquement les ions provenant de<br />

l’éluant.<br />

Extraction des phytates<br />

L’extraction des phytates se fait à l’acide chlorhydrique: 100 mg d’échantillon lyophilisé et 5<br />

ml d’acide chlorhydrique 0,5N sont placés dans des béchers d’eau bouillante pendant 6 min<br />

sous agitation. La première minute sert à atteindre la température d’extraction à l’intérieur du<br />

tube et durant les 5 minutes restantes a lieu l’extraction. Le mélange est ensuite centrifugé<br />

pendant 20 minutes à 4000 rpm, le surnageant est recueilli et repris dans 1,5 ml d’acide<br />

chlorhydrique concentré. Le mélange est évaporé sous vide à 40°C pendant une nuit (Speed<br />

Vac RC 10.10). Le culot obtenu est stocké à 4°C jusqu’au dosage.<br />

Dosage par HPIC<br />

Au cours des 10 minutes qui précèdent l’injection de la préparation dans le chromatographe,<br />

le culot est repris dans 2 ml d’eau millipore et filtrée (Acrodisc de 0,2µm). Le filtrat obtenu<br />

est dilué au 1/25 et 50 µl sont passés sur une colonne échangeuse d’anions Omnipac pax-100<br />

(25 cm x 4 mm I.D) équipée d’une pré colonne Omnipac pax-100 (8µm) et d’un suppresseur<br />

d’anions (AMMS* III4-mm). La séparation est assurée par un gradient d’élution composé de<br />

trois solvants : NaOH, isopropanol, eau.<br />

III.1.7. Dosage des mono- diholosides et des α-galactosides<br />

L’extraction des oses contenus dans les échantillons se fait à l’éthanol : 80 mg d’échantillon<br />

lyophilisé et 3 ml de solution d’éthanol à 80% sont mis au bain-marie à 90°C sous agitation<br />

durant 30 minutes. Le mélange est centrifugé pendant 15 minutes à 4000 rpm à 4°C, le<br />

surnageant est recueilli et mis de côté. Le culot est repris dans 3 ml d’éthanol à 80°C et<br />

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