Números 10-12 - Consejo Superior de Investigaciones Científicas

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II. MATERIALES Y MÉTODOS CIENCIA A. Sítelos.—Tuvimos especial cuidado de que éstos fueran representativos de condiciones diversas (calcáreos o no, arenas, limos, arcillas, migajones y tierras francas) con el fin de poder apreciar mejor el valor de las técnicas en todas esas situaciones. Respecto al tipo y condiciones de las muestras de suelo estudiadas, hemos considerado de gran importancia que fueran representativas del área total a que se refiere el examen, siguiendo las instrucciones más recomendadas al respecto (33, 34, 11, 21, 22). Las muestras, después de secadas al aire, pulverizadas y pasadas por un tamiz de 20 mallas, se conservaron en frascos adecuados. Después de obtenidas las muestras se realizaron los análisis mecánicos por el método de Emerson (5, 6), no sin antes haber practicado algunas comparaciones con el método del hidrómetro de Bouyoucos (3) y el método de centrifugación del Burean of Soils, de los EE. UU., aprobado como oficial en el Congreso Agrológico de Meoqui en 1938 (8). Los métodos dieron resultados bastante concordantes especialmente para nuestro propósito que no fué otro que obtener el dato de textura. La determinación de la reacción del suelo se efectuó mediante un potenciómetro tipo Beckman, empleando el extracto de suelo obtenido de un gramo de la muestra secada al aire, agitándola por un minuto en 5 mi. de agua destilada y, en seguida, centrifugándola para usar en la determinación el líquido sobrenadante. B. Técnica de Sackett et al.—Se practicó esta téc* nica siguiendo las instrucciones de los autores (33, 39), tomando en cada caso 4 porciones de la muestra, de 50 gramos cada una. Como fuentes energéticas para el desarrollo de Azotobacter se utiliza almidón o sacarosa por su bajo costo, no sin reconocer que el manitol es una fuente de carbono de mayor especificidad para Alotobacter (42). Las tierras de tipo arcilloso, que presentan aereación defectuosa y por ello interfieren con el desarrollo de Azotobacter, se corrigieron agregando 16 a 20% (8-10 gr. por placa) de arena silícea lavada. Con las tierras de tipo "arenoso", por otra parte, es difícil preparar placas de superficie lisa en las que las colonias de Aiotobacter, aparezcan claramente; por este motivo se corrigieron mediante la adición de 10 a 20% de caolín puro. En estas muestras se usó siempre como fuente de carbono la sacarosa, por las razones expuestas. Todas las muestras cuyo pH fué menor de 6.8, se adicionaron de pequeñas cantidades de CaCO^ (más o menos I gr.) y aquellas cuyo pH excedía de 8.5 al tratárseles con fosfato, fué substituido el Na 3HP0 4, por H 3P0 4, usando un peso equivalente. Las placas ya preparadas se colocaron en una cámara húmeda. De esta manera es posible mantener las placas en igualdad de condiciones, por lo que respecta a humedad, durante las 72-64 horas a 28* C. que dura la incubación. Al cabo de este tiempo se efectuó la lectura, tomando como base para la interpretación lo expuesto más adelante, puesto que el criterio es el mismo en los dos métodos seguidos. En todos los casos se practicó el análisis mecánico de las muestras, se determinó su pH y se hicieron las correcciones necesarias. :. : ;, . . . . . :.:.¡ i 356 C. Técnica de Hahenen y Hoge (17).—Siguiendo las instrucciones dadas por los autores en 1942, se aplicó esta técnica al estudio de todas las muestras, tomando las mismas precauciones que para el método anterior en lo que se refiere a muestreo y preparación del suelo. El equivalente de sales fertilizantes agregadas, fué el mismo que el de las soluciones del método de Sackett. Como fuente de carbono se utilizó en unos casos el almidón, como lo recomiendan los autores y, en otros, suprimimos este polisacárico, sustituyéndolo por glucosa o sacarosa, añadida previamente al agar en una cantidad tal que en los 40 mi. de agar al 2%, hubiera un gramo del azúcar. Con esta modificación encontramos que es posible obtener un mejor desarrollo de colonias típicas de Aiotobacter, al mismo tiempo que se evitan algunas de las manipulaciones engorrosas (pesadas y homogeneización). La inoculación se efectuó con Aiotobacter aislados por nosotros de las muestras 6 y 7, por el método de la placa de Winogradsky y del velo formado en cultivos líquidos en el medio de Beijerinck (medio 77 de Fred Waksman) (11) y conservados en este mismo medio añadido de agar. La especie se identificó como Aiotobacter chroococcum Beijerinck (4). Las placas se colocaron en cámara húmeda y se incubaron a 28° C, durante 72 a 84 horas. D. Método de Morgan.—Lis muestras se tomaron y prepararon conforme se indicó con anterioridad, llenando los requisitos que Morgan indica en sus trabajos (32, 33). Las determinaciones se concretaron al cuanteo de K 30 y P 2O a. Los valores se expresaron en kilos por hectárea, cuya correspondencia, en términos de contenido en fertilizante es, de acuerdo con Morgan, como sigue: Para K aO K«./Ha. Denominación Para P,Oa Kg./Ha. Denominación 670 Extra-Rico 340 Muy Rico 560 Muy Rico. 220 Rico 440 Rico 110 Abundante 330 Abundante 56 Bueno 230 Bueno 28 Pobre 170 Pobre 11 Muy Rico Como se ve, los valores en K 20 por Má. superiores a 230 corresponden a suelos no deficientes, y los inferiores a esta cifra son ya deficientes. Respecto al P 20 5, los valores inferiores a 56 indican deficiencia. III. RESULTADOS E INTERPRETACIONES Siguiendo los métodos anteriormente expues tos se efectuaron las pruebas para deficiencias, en fosfatos y potasio, en 55 muestras cuya pro cedencia, tipo agrológico, reacción, etc., aparecen en la Tabla I. AI practicar las pruebas se tuvieron en cuen ta todos los factores ya señalados, poniendo es pecial atención en lo referente a la reacción del
CIENCIA suelo, por ser el factor de mayor interés respec to a la presencia de A^otobacter. En este sentido, se practicaron pruebas por duplicado con aque llas tierras cuyo pH era menor de 6.8, tanto con N-'mii. de la m ti cetra 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 Ajonjolí. Algodón. Algodón. Algodón, Algodón, Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa Alfalfa. Alfalfa. Algodón Alfalfa. Maíz... Maíz. Frijol. . Frijol. . Ajonjolí Chile.. . Algodón. Algodón Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa. . Papa Papa., . . Papa.. . . Papa Maíz. . . Lúpulo. . Lúpulo. . Lúpulo. . Lúpulo.. Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa. . Alfalfa. . T A B L A I CARACTERÍSTICAS GBNBRAI.KS DK LOS SUELOS ESTUDIADOS Clase de cultivo LOCALIDAD Noche Buena, Sin Noche Buena, Sin Noche Buena, Sin, Noche Buena, Sin. Noche Buena, Sin. Tacuba, D. F . . Tacuba, D. F Cerro Gordo, Méx. Venta de Carpió, Méx. Venta de Carpió, Méx. San Agustín, Méx.... Noche Buena, Sin. . . . Ozumbilla, Méx Ozumbilla, Méx Sto. Tomás Chiconautla, Méx Sto. Tomás Chiconautla, Méx San Cristóbal Kcatepec, Méx. Tres Hermanos, Sin ^. Tres Hermanos, Sin Tres Hermanos, Sin. Noche Buena, Sin. . Cuautitlán, Méx.. . Cuautitlán, Méx.. . Cuautitlán, Méx.. Cuautitlán, Méx.. . Cuautitlán, Méx.. . Cuautitlán, Méx.. . Huaxtho, ligo.... . Huaxtho, ligo Huaxtho, ligo Huaxtho, HgO Villa Madero, Méx Córdoba, Ver Córdoba, Ver Córdoba, Ver Córdoba, Ver Cuautitlán, Méx.. . Cuautitlán, Méx . . Cuautitlán, Méx.. . Cuautitlán, Méx., . adición de CaCO. t (50, 63) como sin él. Los re sultados obtenidos fueron semejantes, lo que prueba que el pH de 6.28 de la muestra 3, el más bajo'de todos (ver tabla I), es todavía adecuado para el desarrollo de A^otobacter (24, 25, 26). Respecto a las tierras alcalinas (pH mayor de 8.5) su tratamiento para P 2O a se hizo compara damente con Na 2HP0 4 y H sP0 4. Los resultados 357 obtenidos dieron, en algunas muestras (Nos. 19, 11, 21, 24 y 25), un desarrollo de colonias de mayor consistencia que en las pruebas cuyo tra tamiento se hizo con H aPG 4 en lugar de NajliPO^ TIPO D E S U E L O Migajón arcilloso Migajón arcilloso Franca Migajón arcilloso Migajón arenoso Migajón arcilloso-arenoso. Migajón arcilloso-arenoso. Arena Migajón arenoso. Migajón arenoso. Migajón arenoso.. Migajón arcilloso. Arena. Arena. Arena. Arena. Arena. Migajón arenoso. Migajón arenoso. Migajón arenoso. Migajón arenoso. Migajón arenoso.. Migajón arenoso.. Arena Arena Arena Arena Migajón arcilloso. Migajón arcilloso. Migajón arcilloso. Migajón arcilloso. Migajón arenoso.. Migajón arenoso.. Migajón arenoso.. Migajón arenoso.. Arcilla Arena Arena Arena Arena Reacción ÍPH) 6.37 6.71 6.28 6.46 6.35 6.50 6.86 7.63 7.35 7.23 7.25 7.30 7.02 6.62 9.30 8.51 7.20 7.75 7.53 7.75 7.28 7.42 7.35 7.63 8.45 8.50 8.41 8.50 6.88 7.10 9.29 8.67 6.56 7.00 8.93 8.10 7.15 8.45 8.89 9.10 8.39 7.18 8.05 7.40 8.20 7.85 7.50 7.65 7.35 7.50 7.65 7.20 7.80 7.ÍÍ0 Y.85 que normalmente usamos. Sin embargo, hubo concordancia en lo que se refiere a la interpreta ción de los resultados. Los obtenidos respecto a la valoración de las deficiencias por las técnicas de Sackett y de Halversen aparecen en las tablas II y III, respectivamente. Tanto para el método de Halversen como para el de Sackett, el siguiente criterio se ha
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