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Indice - Giornale Italiano di Medicina del Lavoro ed Ergonomia ...

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16 G Ital M<strong>ed</strong> Lav Erg 2006; 28:3, Suppl<br />

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Am J Ind M<strong>ed</strong> 1997; 32: 510-516.<br />

P-05<br />

32 P-POSTLABELING E POLIACRILAMIDE GEL ELETTROFORESI:<br />

CONFRONTO E APPLICAZIONE DELLE DUE TECNICHE<br />

PER IL RILEVAMENTO DEGLI ADDOTTI AL DNA<br />

B. Pappalar<strong>di</strong>1 , M.V. Policastro1 , P. Chiumarulo1 , G. Assennato1 ,<br />

P. Corsi2 1 Dip. <strong>di</strong> Me<strong>di</strong>cina Interna e Pubblica, Sez. <strong>di</strong> Me<strong>di</strong>cina <strong>del</strong> <strong>Lavoro</strong><br />

B. Ramazzini<br />

2 Dip. <strong>di</strong> Farmacologia e Fisiologia Umana<br />

Facoltà <strong>di</strong> Me<strong>di</strong>cina e Chirurgia, Università degli Stu<strong>di</strong> <strong>di</strong> Bari,<br />

Policlinico, Piazza G. Cesare 11, 70124 Bari<br />

Corrispondenza: Brigida Pappalar<strong>di</strong> - Dip. <strong>di</strong> Me<strong>di</strong>cina Interna<br />

e Pubblica, Sez. <strong>di</strong> Me<strong>di</strong>cina <strong>del</strong> <strong>Lavoro</strong> B. Ramazzini, Facoltà<br />

<strong>di</strong> Me<strong>di</strong>cina e Chirurgia, Università degli Stu<strong>di</strong> <strong>di</strong> Bari, Policlinico<br />

- Piazza G. Cesare 11 - 70124 Bari, Italy<br />

32 P-POSTLABELING AND POLYACRYLAMIDE GEL<br />

ELECTROPHORESIS ANALYSIS: COMPARISON OF TWO<br />

TECHNIQUES FOR THE DETECTION OF DNA ADDUCTS<br />

Key words: 32 P-Postlabeling/PAGE, addotti BPDE, TLC.<br />

ABSTRACT. BACKGROUND. 32 P-Postlabeling analysis is a powerful<br />

technique to detect DNA adducts induc<strong>ed</strong> by endogenous and exogenous<br />

mutagens or carcinogens. OBJECTIVES. In the present study two<br />

techniques were appli<strong>ed</strong> to the detection of BPDE-DNA adducts:<br />

a newly develop<strong>ed</strong> Postlabeling coupl<strong>ed</strong> with nondenaturing<br />

20% polyacrylamide gel electrophoresis, 32 P-Postlabeling/PAGE<br />

and 32 P-Postlabeling/TLC. The aim was to consider PAGE valuable<br />

and wi<strong>del</strong>y useful also for biomonitoring study of exposure to PAH.<br />

METHODS. Polyethylenimine (PEI)-cellulose TLC plates were us<strong>ed</strong><br />

to separate 32 P-label<strong>ed</strong> adducts two-<strong>di</strong>mensionally under several<br />

<strong>di</strong>fferent buffer con<strong>di</strong>tions; the same DNA samples were appli<strong>ed</strong><br />

on nondenaturing 20% polyacrylamide gel electrophoresis for<br />

32 P-Postlabeling/PAGE. CONCLUSIONS. While the major advantage<br />

of this technique is that many DNA samples can be analys<strong>ed</strong><br />

on the same gel and resolv<strong>ed</strong> in a few hours nevertheless it show<strong>ed</strong><br />

lower recoveries of BPDE-DNA adducts compar<strong>ed</strong> to TLC.<br />

INTRODUZIONE<br />

Il 32 P-Postlabeling/TLC è una tecnica largamente utilizzata in stu<strong>di</strong> <strong>di</strong><br />

biomonitoraggio in lavoratori esposti a contaminanti ambientali e cancerogeni.<br />

Inoltre è capace <strong>di</strong> valutare una grande varietà <strong>di</strong> addotti partendo<br />

da esigue quantità <strong>di</strong> DNA (1-5 µg) (1, 2). Nell’analisi per 32 P-Postlabeling<br />

i nucleoti<strong>di</strong> mo<strong>di</strong>ficati e marcati in posizione idrossilica 5’ con [γ 32 P]-<br />

ATP sono caricati su lastre <strong>di</strong> polietilenimina cellulosa e migrano per cromatografia<br />

su strato sottile (TLC) (4). Di recente in letteratura è emersa<br />

una proc<strong>ed</strong>ura <strong>di</strong> identificazione degli addotti al DNA che si basa sull’applicazione<br />

<strong>di</strong> gel <strong>di</strong> elettroforesi non denaturante al 30% poliacrilamide all’analisi<br />

<strong>del</strong> 32 P-Postlabeling ( 32 P-Postlabeling/PAGE) (5). I maggiori<br />

vantaggi <strong>di</strong> questa tecnica comprendono la possibilità <strong>di</strong> valutare più campioni<br />

<strong>di</strong> DNA caricandoli su un unico gel e una sola corsa <strong>di</strong> migrazione<br />

in tempi più brevi (6 ore). Questa tecnica offrirebbe la stessa versatilità<br />

nella rilevazione <strong>di</strong> <strong>di</strong>versi tipi <strong>di</strong> addotti e con un limite <strong>di</strong> rilevamento<br />

pari a 0,007 addotti /10 6 nucleoti<strong>di</strong> per 5 µg <strong>di</strong> DNA. Nel presente stu<strong>di</strong>o<br />

è stato verificata la sensibilità <strong>del</strong>le due tecniche <strong>di</strong> Postlabeling usando<br />

uno standard <strong>di</strong> DNA contenente da 0,007 addotti/10 6 nucleoti<strong>di</strong> fino a 7<br />

addotti/10 6 nucleoti<strong>di</strong> questo allo scopo <strong>di</strong> verificare il grado <strong>di</strong> sensibilità<br />

<strong>del</strong> PAGE per future applicazioni a stu<strong>di</strong> <strong>di</strong> bio-monitoraggio ambientale.<br />

METODI<br />

Campioni <strong>di</strong> DNA standard (5 µg) contenenti da 0,007 addotti/10 6<br />

nucleoti<strong>di</strong> a 7 addotti/10 6 nucleoti<strong>di</strong> sono stati idrolizzati e marcati<br />

usando il metodo monofosfato (3). Per 32 P-Postlabelling/TLC i campioni<br />

marcati sono stati caricati su lastre <strong>di</strong> PEI e separati in due <strong>di</strong>mensioni secondo<br />

il metodo classico (4). Per 32 P-Postlabelling/PAGE i campioni venivano<br />

caricati su gel <strong>di</strong> elettroforesi non denaturante al 20% <strong>di</strong> poliacrilamide<br />

e fatti migrare in tampone TBE (5). Per entrambi i meto<strong>di</strong> gli addotti<br />

al DNA venivano analizzati me<strong>di</strong>ante acquisizione al Phosphor Imager<br />

STORM 820 (Amersham).<br />

RISULTATI<br />

I campioni <strong>di</strong> DNA standard utilizzati per i due meto<strong>di</strong> <strong>di</strong> Postlabeling,<br />

sono stati ottenuti aggiungendo a 5 µg <strong>di</strong> DNA genomico umano<br />

quantità scalari <strong>di</strong> dG-BPDE in modo da ottenere 7 addotti/10 6 dNp, 0,7<br />

addotti/10 6 dNp, 0,07 addotti/10 6 dNp, 0,007 addotti/10 6 dNp rispettivamente.<br />

I campioni così preparati davano due spots visibili sia sul gel che<br />

sulle lastrine <strong>di</strong> TLC/PEI, Figura 1. Dall’analisi con il Phosphor Imager<br />

risultavano valori <strong>di</strong> addotti pari al 12% <strong>del</strong> valore iniziale per il PAGE e<br />

al 50% per la TLC, (Correlation test, r 2 =0,9159), Tabella I.<br />

Tabella I. 32 P-Postlabeling<br />

PAGE TLC<br />

r 2<br />

7 addotti/10 6 dNp 0,695±0,45 3,515±1,245 0,9159<br />

0,7 addotti/10 6 dNp 0,115±0,085 0,380±0,020<br />

0,07 addotti/10 6 dNp 0,004±0,001 0,058±0,041<br />

0,007 addotti/10 6 dNp 0,001±0,0002 0,001±0,0002<br />

Figura 1. Determinazione degli addotti BPDE-DNA secondo la tecnica<br />

<strong>del</strong> 32 P-Postlabeling/PAGE (A) e <strong>del</strong> 32 P-Postlabeling/TLC (B).<br />

N.1=0,007; N.2=0,07; N.3=0,7; N.4=7 addotti /10 6 dNp.

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