Pharmakologie der ADP-Rezeptoren auf humanen Thrombozyten
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mit Insert erscheinen weiß) verfügen und diese ohnehin nicht 100% zuverlässig ist, müssen die<br />
Plasmide <strong>auf</strong> Insertion des Fragments überprüft werden. Dies erfolgt entwe<strong>der</strong> über eine<br />
analytische Spaltung <strong>der</strong> präparierten Plasmid-DNA (siehe 3.8.2.5.2) o<strong>der</strong> über eine PCR direkt aus<br />
<strong>der</strong> Bakterien-Kultur für einen “Mini-Prep”.<br />
Für die PCR wurde folgen<strong>der</strong> Ansatz verwendet:<br />
Übernacht-Kultur 1 µl<br />
Primer I 1 µl<br />
Primer II 1 µl<br />
Q-Mix (QIAGEN)<br />
ad 20 µl dH2O<br />
10 µl<br />
Das Programm kann <strong>auf</strong> 30 Zyklen (94°C 1 Minute, 50°C 1 Minute, 72°C 1 Minute) beschränkt<br />
werden.<br />
Übernacht-Kulturen, die ein PCR-Produkt liefern, werden entsprechend 3.8.1.2 <strong>auf</strong>gearbeitet und<br />
die Plasmid-DNA isoliert.<br />
3.8.16 Plasmid-Sequenzierung<br />
Zur genauerern Verifizierung <strong>der</strong> Klone werden diese sequenziert. Dabei wird folgende Reaktion<br />
durchgeführt, beruhend <strong>auf</strong> <strong>der</strong> von Sanger et al 1977 beschriebenen Dideoxy-Methode (127):<br />
Plasmid (= 5 µl bei 0.1 ug/µl für Doppelstrang-DNA) 500 ng<br />
Sequenzier-Primer (T3, T7, SP6) (= 5 pmol aus 2.5 µm Stock-Lösung) 2 µl<br />
Big Dye Terminator Ready Reaction Mix<br />
ad 20 µl dH2O<br />
8 µl<br />
Programm:<br />
96°C 10 Sekunden<br />
50°C 5 Sekunden<br />
60°C 4 Minuten<br />
25 Zyklen, dann Abkühlung <strong>auf</strong> 4°C.<br />
Anschließend wird die DNA mit 2 µl 3M Na-Acetat und 50 µl 100%igem Ethanol gefällt (30 Minuten<br />
Zentrifugation bei 4°C) und mit 250 µl 80%igem Ethanol gewaschen (10 Minuten Zentrifugation bei<br />
4°C). Nach vollständiger Entfernung des Ethanols wird das Pellet 2 Minuten in <strong>der</strong> Speedvac<br />
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