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Análisis de la expresión de 103 ORFs de función desconocida en S. cerevisiae<br />

Se enrasó con agua bidestilada estéril para obtener un volumen final de<br />

100 µl y se cubrió con dos gotas de aceite mineral para impedir la<br />

evaporación durante la síntesis. A continuación, se desnaturalizó el DNA<br />

durante 5 minutos a 92 °C, se enfiió en hielo y se le añadieron 2,5 U de Taq<br />

DNA polimerasa cuya temperatura óptima de trabajo es de 72 °C.<br />

Se colocó el tubo con la mezcla en el termociclador, Gene ATAQ<br />

ContYOller de Pharmacia; este instrumento que proporciona automáticamente<br />

variaciones rápidas y cíclicas de temperatura se programó para realizar 30<br />

ciclos de amplificación.<br />

En teoría, después de 20 ciclos, una molécula de DNA se amplifica al<br />

rededor de un millón de veces, pero en la práctica, la amplificación no es<br />

exponencial, especialmente después de 20 ciclos, debido al consumo parcial<br />

de los cebadores y a una cierta desnaturalización térmica de la Taq<br />

polimerasa.<br />

La temperatura de anillamiento se calculó mediante el programa<br />

OLIGO. Todos los oligonucleótidos se seleccionaron de forma que las<br />

condiciones de a.nillamiento fuesen óptimas alrededor de 45-50 °C. A esta<br />

temperatura cerca del 90 % de los cebadores se unen al DNA molde. El paso<br />

siguiente a 72 °C (alargamiento) interrumpe las hibridaciones inespecíficas<br />

accidentales. La duración de la fase de alargamiento (72 °C) en el último ciclo<br />

se extendió a 120 segundos para darle tiempo suficiente a la Taq polimerasa<br />

de finalizar la síntesis de todos los fragmentos.<br />

Finalizada la reacción de PCR, se transfirió la muestra resultante (sin el<br />

aceite mineral) a un tubo Eppendorf, se le añadió 5 µl de Acetato Sódico 3 M,<br />

120 µl de etanol absoluto y se dejó precipitando toda una noche en el<br />

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