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MATERIALES Y MÉTODOS<br />
La mayor parte de los análisis de restricción mostraron el patrón<br />
adecuado. Sin embargo para 16 ORFs (marcadas con un asterisco en las<br />
figuras 3.5.1. y 3.5.2.), además del producto esperado aparece otra banda, o<br />
bandas mayores inespecíficas. En este caso se rescató de un gel de agarosa la<br />
banda del tamaño adecuado antes de marcar la sonda.<br />
Se presentaron también algunos casos (Figuras 3.5.1. y 3.5.2.) en los<br />
que, aunque el producto es de tamaño adecuado, no se produce la digestión<br />
esperada (N1743, N1888, N1929, N2194 y N1966), o ésta es parcial (G2856,<br />
G2882, G3080, G3193, G3505 y N1773). Esta situación podría interpretarse<br />
debido al hecho de que la región del sitio de restricción para la enzima<br />
utilizada estuviese metilada afectando al patrón de restricción, sin que ello<br />
indicase que el producto obtenido no es correcto. En estos casos, como el<br />
tamaño del fragmento no digerido era correcto y el producto de la PCR único,<br />
se optó por considerarlos adecuados, aunque posteriormente fuese necesario<br />
secuenciar parcialmente estos productos para tener total certeza sobre su<br />
idoneidad.<br />
3.5.4.2. Cuantificación de los niveles de DNA:<br />
Para poder marcar una cantidad definida de sonda en los pasos<br />
siguientes, se necesita averiguar la concentración de DNA resultante de cada<br />
PCR. Para ello se preparó un gel de agarosa al 0,8 % en 1 xTBE (Tris-HC1 90<br />
mM, ácido bórico 90 mM, EDTA 4 mM, pH 8,3 ) con Bromuro de Etidio<br />
(1 µg/ml) sobre el cual se depositaron gotas de 1 µl del producto de cada PCR<br />
y una gota de 1 µl para cada uno de los siete patrones de concentración<br />
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