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MATERIALES Y MÉTODOS<br />

La mayor parte de los análisis de restricción mostraron el patrón<br />

adecuado. Sin embargo para 16 ORFs (marcadas con un asterisco en las<br />

figuras 3.5.1. y 3.5.2.), además del producto esperado aparece otra banda, o<br />

bandas mayores inespecíficas. En este caso se rescató de un gel de agarosa la<br />

banda del tamaño adecuado antes de marcar la sonda.<br />

Se presentaron también algunos casos (Figuras 3.5.1. y 3.5.2.) en los<br />

que, aunque el producto es de tamaño adecuado, no se produce la digestión<br />

esperada (N1743, N1888, N1929, N2194 y N1966), o ésta es parcial (G2856,<br />

G2882, G3080, G3193, G3505 y N1773). Esta situación podría interpretarse<br />

debido al hecho de que la región del sitio de restricción para la enzima<br />

utilizada estuviese metilada afectando al patrón de restricción, sin que ello<br />

indicase que el producto obtenido no es correcto. En estos casos, como el<br />

tamaño del fragmento no digerido era correcto y el producto de la PCR único,<br />

se optó por considerarlos adecuados, aunque posteriormente fuese necesario<br />

secuenciar parcialmente estos productos para tener total certeza sobre su<br />

idoneidad.<br />

3.5.4.2. Cuantificación de los niveles de DNA:<br />

Para poder marcar una cantidad definida de sonda en los pasos<br />

siguientes, se necesita averiguar la concentración de DNA resultante de cada<br />

PCR. Para ello se preparó un gel de agarosa al 0,8 % en 1 xTBE (Tris-HC1 90<br />

mM, ácido bórico 90 mM, EDTA 4 mM, pH 8,3 ) con Bromuro de Etidio<br />

(1 µg/ml) sobre el cual se depositaron gotas de 1 µl del producto de cada PCR<br />

y una gota de 1 µl para cada uno de los siete patrones de concentración<br />

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