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Inaktivierung von Proteinen und Zellen durch Laserbestrahlung von ...

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Material <strong>und</strong> Methoden 97<br />

abnehmen. Photobleaching kann die Messungen beeinflussen <strong>und</strong> muss deshalb<br />

je nach verwendetem Farbstoff berücksichtigt werden.<br />

Die Reproduzier- <strong>und</strong> Messgenauigkeit wurde anschließend mit dem Enzymassay<br />

der alkalische Phosphatase quantifiziert. Jeweils 50 Tropfen alkalische Phosphatase<br />

mit einem Gesamtvolumen <strong>von</strong> 1.6 nl (caP = 10 mg/l) wurden 30 min<br />

auf dem Probenträger gehalten. Anschließend wurden 8 nl 4MUP-Substratpuffer<br />

(c = 1 mM) zu jedem Probentropfen hinzugegeben. Die Abbildung 3.31 zeigt die<br />

Fluoreszenz der Proben, die in einem Abstand <strong>von</strong> 3 min jeweils 5 mal für je 20 s<br />

vermessen wurden.<br />

Zahl der Photonen [s ]<br />

-1<br />

22000<br />

20000<br />

18000<br />

16000<br />

14000<br />

12000<br />

10000<br />

0 180 360 540 720<br />

Abbildung 3.31: Fluoreszenzsignalanstieg <strong>durch</strong> die Phosphataseaktivität in 6 Tropfen<br />

aus nl-Phosphataselösung mit Substrat aus einem Probenraster. Die Substratfluoreszenz<br />

wurde alle 180 s gemessen.<br />

Die Proben wurden für 20 s ausgelesen, um ein Ausbleichen des Farbstoffs zu<br />

verhindern. Durch die Aktivität der Phosphatase steigt die Fluoreszenz linear<br />

mit der Zeit an, wobei die Steigung ein Maß für die Gesamtenzymaktivität<br />

in der Probe ist. Die Steigungen der einzelnen Proben stimmen überein. Die<br />

Abweichung <strong>von</strong> maximaler zu minimaler Steigung beträgt 6.1 %. Das Signal-zu-<br />

Rausch-Verhältnis, definiert als das Quantenrauschen innerhalb der 20 s Messzeit<br />

t [s]

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