In - bei Duepublico - an der Universität Duisburg-Essen

Ergebnisse und Diskussion – Biologische Aktivität
sichtbar, welche in Abbildung 57D nicht vorhanden sind. Die Agglomerate sind
als schwarze Punkte erkennbar und sind über den gesamten Bildausschnitt
verteilt.
Wie bereits in vorherigen Experimenten gezeigt werden konnte, lösen sich mit
der Zeit Silberionen aus den Partikeln heraus. Aus diesem Grund enthielten die
sechs Monate alten Proben einen größeren Ionenanteil als die frisch
synthetisierten Partikel. Außerdem altern die Partikel, was sich in größeren
Partikeln oder Agglomeraten äußert. Zusätzlich lagen in den gealterten Proben
mehr Agglomerate vor. Diese Effekte sind dafür verantwortlich, dass die hMSCs
verschieden auf die unterschiedlich alten Partikel reagiert haben. Es konnte
bisher anhand von Viabilitätstest gezeigt werden, dass die Silberionen eine
toxischere Wirkung auf die Zellen haben als die Nanopartikel. Damit lässt sich
erklären, warum nach sechs Monaten keine lebenden Zellen mehr gefunden
wurden. Die Silberionen-Konzentration in der Dispersion war in dieser Zeit
deutlich gestiegen. Überraschenderweise war nur die Zugabe der Partikel zu den
bereits adhärenten Zellen toxisch für die hMSCs. Sind die Partikel schon
während der Inkubationszeit zugegen gewesen, führte dies nicht zum Zelltod.
Die Agglomerate in Abbildung 57B, die bei der Zugabe der frisch
synthetisierten nach der Inkubationszeit entstanden sind, deuten auf eine
zelluläre Aufnahme von Partikeln hin, die dann in der Zelle agglomeriert sind.
4.4.2 Proliferation
Die Proliferation, also die Vermehrung der Zellen durch Zellteilung, wurde mit
Hilfe der AlamarBlue TM -Färbung untersucht. Dabei wird die Anzahl der
lebenden Zellen indirekt durch die Bestimmung der mitochondrialen
metabolischen Zellaktivität gemessen. Das System enthält einen Redox-
Indikator, der seine Fluoreszenz und Farbe durch chemische Reduktion während
140