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3.4-CARACTERIZAÇÃO DA LACASE<br />
3.4.1-DETERMINAÇÃO DA MASSA MOLAR DA LACASE<br />
A massa molar foi determinada por HPLC (High Performance Liquid<br />
Chromatografhy), utilizan<strong>do</strong>-se um cromatógrafo Shimadzu, equipa<strong>do</strong> com um detector SPD-<br />
10A UV-VIS e com uma coluna Diol-150 da Shimadzu. O eluente utiliza<strong>do</strong> foi o tampão Tris<br />
(pH=9,0), com um fluxo de 1 ml/min. A proteína padrão utilizada foi <strong>do</strong> tipo MW-GF-200<br />
kit; Sigma.<br />
3.4.2-DETERMINAÇÃO DA ATIVIDADE ENZIMÁTICA<br />
Para a enzima <strong>livre</strong> e imobilizada, foram realizadas as determinações enzimáticas<br />
utilizan<strong>do</strong>-se o méto<strong>do</strong> de Ander e Eriksson (1976). Esse méto<strong>do</strong> se baseia na oxidação de<br />
siringaldazina para sua forma quinona, que apresenta absorção à 525nm (ε = 65 mM -1 cm -1 ).<br />
Os da<strong>do</strong>s foram obti<strong>do</strong>s com o auxílio de um espectrofotômetro Hewlett-Packard. Para<br />
determinação da atividade foram utiliza<strong>do</strong>s: 500 μL de tampão fosfato (0,1 M) pH=4,0, 50μL<br />
de solução enzimática 0,5 g/L ou 0,07 g de suporte com enzima e 25 μL de solução alcoólica<br />
de siringaldazina (0,5 g/L) em uma cubeta de quartzo de 1 mL ou cubeta de vidro de 3 mL<br />
para o caso da enzima imobilizada. Uma unidade enzimática (U) foi definida como a<br />
quantidade de enzima <strong>livre</strong> ou imobilizada necessária para oxidar 1 μM de substrato por<br />
minuto.<br />
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