Progetto HIGHEST - Relazione Finale - Museo Tridentino di Scienze ...

La produttività primaria è stata stimata attraverso la misura della concentrazione di clorofilla a e
della feofitina a. La misura della concentrazione di clorofilla in un tratto di torrente richiede una
serie di passaggi. Innanzitutto, il prelievo delle alghe: con un comune spazzolino da denti viene
grattata una superficie nota (per esempio un quadrato di 9 cm 2 da un sasso prelevato dal letto del
fiume). Lo spazzolino viene poi sciacquato in acqua distillata (circa 20 ml) per trasferire qui le alghe
raccolte. L’acqua contenente le alghe grattate viene poi filtrata sul campo su filtri in fibra di vetro,
successivamente ripiegati e conservati al buio, in freezer, ad una temperatura di –18°C (questo
serve per evitare la degradazione della clorofilla). In laboratorio si procede poi all’estrazione della
clorofilla dai filtri: la clorofilla a viene estratta immergendolo ciascun filtro in 17 ml di acetone al
95% per almeno 12 ore in frigorifero. Si procede poi con la centrifugazione dell’estratto per
eliminare particelle solide ed eventuali altre impurità. La clorofilla a risulta facilmente distinguibile
da altri pigmenti attraverso il confronto di due letture spettrofotometriche, prima e dopo la
degradazione del pigmento, ottenuta mediante l’aggiunta di acido solforico. Il calcolo della
concentrazione del pigmento si realizza attraverso un’equazione che tiene conto di tutte le
variabili del procedimento e della differenza dei picchi di assorbimento fra prima e seconda
lettura. La determinazione della clorofilla a nei laghi segue una procedura molto simile. Il
campionamento avviene con una bottiglia Patalas‐Schiendler. L’acqua campionata viene poi
filtrata sul campo, avendo cura di annotare il volume filtrato. La procedura è per il resto la
medesima descritta per la determinazione della clorofilla nei fiumi.
Pompa a vuoto per filtrare i campioni
da analizzare per la produzione
primaria (clororofilla a) (Foto Mario
Moser).
Le ricerche in campo biologico hanno riguardato le alghe (periphyton) e la fauna di ambienti
bentonici (zoobenthos) e iporreici. Nella maggior parte dei casi, campioni semi‐quantitativi di
fauna bentonica sono stati raccolti con due metodiche comuni negli studi idrobiologici: i retini
immanicati per il metodo del kick‐sampling, e i retini da drift (Scheda 5). Per quanto riguarda il
metodo del kick sampling, in ogni stazione (lunga 15 metri), sono stati raccolti 5 campioni di
zoobenthos usando un retino immanicato (con maglie di 100 o 250 μm.). Questo viene appoggiato
sul fondo del corso d’acqua con l’apertura perpendicolare al flusso dell’acqua, sotto‐corrente di
una zona che viene “disturbata” smuovendo con i piedi il sedimento e i ciottoli del fondo, quindi
staccando dal fondo i macroinvertebrati che vengono raccolti dal retino. La superficie “disturbata”
ha variato da 0,1 a 0,3 m 2 a seconda della ricerca, e la somma di cinque aree“disturbate”, che
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