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THESE Anne POSTEC Diversité de populations microbiennes ...

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Matériel et métho<strong>de</strong>s<br />

(AcNa 3M, pH 5,2) dont le rôle anti-chaotropique favorise la précipitation <strong>de</strong> l’ADN (volume<br />

AcNa 3M = 1/10è du volume <strong>de</strong> solution aqueuse contenant l’ADN après extraction).<br />

L’ADN est récupéré par centrifugation 35 min à 10 000 g. Le culot d’ADN est séché à<br />

l’air à température ambiante, repris dans <strong>de</strong> l’eau MilliQ stérile ou du tampon TE 1X ( 10 mM<br />

Tris/HCl, 2 mM EDTA, pH 7.5), et stocké à 4°C.<br />

- contrôle : une migration <strong>de</strong> l’ADN par électrophorèse permet <strong>de</strong> contrôler la qualité<br />

<strong>de</strong> l’ADN extrait, <strong>de</strong> visualiser une éventuelle dégradation, et d’en estimer la quantité. On<br />

réalise un gel d’agarose 0,8% dans du TAE 1X contenant 0,8 µg. mL -1 <strong>de</strong> bromure d’éthidium<br />

(BET). La migration s’effectue pendant 30 min à 90V : l’ADN chargé négativement migre<br />

vers l’ano<strong>de</strong>. Un marqueur, mélange <strong>de</strong> fragments d'ADN <strong>de</strong> tailles connues, migre<br />

parallèlement à l’ADN étudié et sert <strong>de</strong> référence <strong>de</strong> taille. Le BET s’intercale entre les bases<br />

<strong>de</strong> la molécule d’ADN et permet <strong>de</strong> visualiser les ADN dans le gel sous UV (Fluor-S-<br />

MultiImager <strong>de</strong> BioRad).<br />

3.2 Amplification <strong>de</strong>s gènes par PCR<br />

Cette technique a été employée à plusieurs étapes <strong>de</strong> l’analyse moléculaire, pour<br />

amplifier <strong>de</strong>s gènes d’ADNr 16S à partir :<br />

- d’ADN totaux, extraits <strong>de</strong> la cheminée hydrothermale ou <strong>de</strong> cultures d’enrichissement, en<br />

vue d’une séparation <strong>de</strong>s différents fragments amplifiés par DGGE ou clonage,<br />

- <strong>de</strong> fragments d’ADNr 16S, extraits <strong>de</strong> gel DGGE ou clonés,<br />

- d’ADNc obtenus par RT-PCR,<br />

- d’ADN totaux <strong>de</strong> souches isolées en vue d’une i<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong> la souche par séquençage.<br />

‣ Le milieu d’amplification contient :<br />

- Tampon 10X (Qbiogen)* 5µL (1 X final)<br />

- dNTPs (Eurogentec, 20 mM total) 2µL (200 µM final pour chaque)<br />

- Amorce sens 100 pmol<br />

- Amorce anti-sens 100 pmol<br />

- Taq polymérase (Qbiogen, 5U. µL -1 ) 0,25 à 0,5 µL<br />

- Matrice ADN ≈ 100 ng<br />

- Eau MilliQ stérile QSP 50µL<br />

*Le tampon (Qbiogen) contient 10 mM <strong>de</strong> Tris-HCl pH9, 50 mM <strong>de</strong> KCl, 1,5 mM <strong>de</strong> MgCl 2 ,<br />

0,1% <strong>de</strong> Triton X 100 et 0,2 mg. mL -1 <strong>de</strong> BSA (Bovin Serum Albumin).<br />

Pour amplifier <strong>de</strong>s fragments clonés, les cellules d’E. coli transformées sont<br />

prélevées d’une colonie sur boîte, remises en suspension dans 200 µL d’eau stérile, et 2 µL<br />

<strong>de</strong> cette suspension sont ajoutés au mélange d’amplification.<br />

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