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THESE Anne POSTEC Diversité de populations microbiennes ...

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Matériel et métho<strong>de</strong>s<br />

3.8 Hybridation sur cellules totales (Whole cell hybridization)<br />

Ces expériences ont été menées par Françoise Lesongeur (Ifremer).<br />

Les hybridations ont été réalisées sur lame Teflon ou sur filtre. Les son<strong>de</strong>s<br />

oligonucléotidiques (Eurogentec) ont été utilisées seules (simple hybridation) ou ensemble<br />

(double hybridation) : la son<strong>de</strong> ARCH915 (5’-GTG CTC CCC CGC CAA TTC CT-3’)<br />

marquée à l’indocarbocyanine (Cy3) est spécifique <strong>de</strong>s archées, la son<strong>de</strong> EUB338 (5’-GCT<br />

GCC TCC CGT AGG AGT-3’) marquée avec la fluorescéine-isothiocyanate (FITC) est<br />

spécifique <strong>de</strong>s Bacteria.<br />

‣ Hybridation sur filtre<br />

Après fixation (voir 2.4.1), les cellules stockées dans un tampon PBS/éthanol 50%<br />

(v/v) ont été diluées si nécessaire et filtrées sur un filtre blanc en polycarbonate d’une<br />

porosité <strong>de</strong> 0,2 µm (Isopore Membrane Filter, Millipore) déposé sur une membrane <strong>de</strong><br />

nitrocellulose. Après séchage à température ambiante, les cellules ont été hybridées avec<br />

les son<strong>de</strong>s ARCH915 et/ou EUB338.<br />

L’hybridation a été effectuée pendant 2 h à 46°C, après addition sur chaque filtre <strong>de</strong><br />

1,5 µL <strong>de</strong> la son<strong>de</strong> ARCH915 et/ou 1,5 µL <strong>de</strong> la son<strong>de</strong> EUB338, chacune à une<br />

concentration <strong>de</strong> 50 ng. µL -1 dans 12 µL <strong>de</strong> solution d’hybridation. Les filtres ont été rincés<br />

15 min à 48°C dans une solution <strong>de</strong> lavage appropriée (Tableau 6).<br />

Tableau 6 : Composition <strong>de</strong>s solutions d’hybridation et <strong>de</strong> lavage.<br />

Solutions hybridation lavage<br />

Son<strong>de</strong>s ARCH915 EUB338 ARCH915<br />

+ EUB338<br />

ARCH915 EUB338 ARCH915<br />

+ EUB338<br />

NaCl 5M 360 µL 360 µL 360 µL 700 µL 4,5 mL 1,8 mL<br />

Tris HCl 1M 40 µL 40 µL 200 µL 1 mL 1 mL 5 mL<br />

EDTA 0,5M pH8 - - - 500 µL - -<br />

Formami<strong>de</strong> 700 µL 200 µL 400 µL - - -<br />

SDS 10% 2 µL 2 µL 1 µL 50 µL 50 µL 25 µL<br />

Eau MilliQ 898 µL<br />

(qsp 2 mL)<br />

1398 µL<br />

(qsp 2 mL)<br />

1039 µL<br />

(qsp 2 mL)<br />

47,75 mL<br />

(qsp 50 mL)<br />

44,45 mL<br />

(qsp 50 mL)<br />

43,2 mL<br />

(qsp 50 mL)<br />

Après l’hybridation, une "contre-coloration" <strong>de</strong>s cellules a été réalisée par ajout <strong>de</strong><br />

10 µL <strong>de</strong> DAPI (4’,6’-diamidino-2-phenylindole) à 1 µg. mL -1 sur chaque filtre, puis rincés à<br />

l’eau distillée et à l’alcool 80%. Les filtres ont ensuite été recouverts <strong>de</strong> Citifluor (Citifluor,<br />

UK). L’observation en épifluorescence s’effectue grâce au microscope Olympus BX60<br />

équipé d’une lampe UV et <strong>de</strong> filtres pour le DAPI (excitation 365 nm, émission 397 nm), le<br />

FITC (excitation 492 nm, émission 520 nm) et le Cy3 (excitation 550 nm, émission 570 nm).<br />

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