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THESE Anne POSTEC Diversité de populations microbiennes ...

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Matériel et métho<strong>de</strong>s<br />

- par filtration : les filtres utilisés ont une porosité <strong>de</strong> 0,22 µm (Millipore). Ce mo<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />

stérilisation préserve les éventuels composants thermolabiles du milieu (par ex. vitamines),<br />

et permet d’éviter les réactions <strong>de</strong> Maillard (réactions à chaud entre les groupements<br />

aldéhy<strong>de</strong> <strong>de</strong>s sucres et les amines <strong>de</strong>s pepti<strong>de</strong>s, "caramélisation"). Pour les milieux<br />

contenant <strong>de</strong>s sucres et <strong>de</strong>s pepti<strong>de</strong>s, les solutions concentrées <strong>de</strong> sucres peuvent être<br />

filtrées séparément avant d’être ajoutées aux milieux.<br />

Pour réaliser <strong>de</strong>s cultures en anaérobiose (Figure 2) , les milieux <strong>de</strong> culture stérilisés sont<br />

entrés dans une enceinte anaérobie où ils sont répartis dans les flacons <strong>de</strong> culture.<br />

L’enceinte anaérobie contient un mélange gazeux composé<br />

<strong>de</strong> N 2 /H 2 /CO 2 (90/5/5). La circulation <strong>de</strong> ce mélange gazeux<br />

à travers un catalyseur au palladium assure le maintien <strong>de</strong>s<br />

conditions <strong>de</strong> réduction. Le catalyseur est inefficace en<br />

atmosphère humi<strong>de</strong> et doit être souvent changé, ou<br />

régénéré par passage à l’étuve 3h à 180°C. Les surfaces<br />

internes <strong>de</strong> l’enceinte sont nettoyées avec un produit antibactérien<br />

exempt d’oxygène (par ex ; Mercryl ® contenant un<br />

ammonium quaternaire). Le matériel est décontaminé à<br />

l’alcool avant d’être entré dans l’enceinte. Au laboratoire, une<br />

enceinte anaérobie est consacrée à la répartition <strong>de</strong>s milieux Figure 2 : Enceinte anaérobie<br />

stériles, une secon<strong>de</strong> enceinte sert à la manipulation <strong>de</strong>s<br />

cultures (inoculation etc.).<br />

L’entrée du matériel propre dans l’enceinte se fait via un sas : une pompe à vi<strong>de</strong> permet<br />

d’éliminer l’air, puis le sas est rempli d’azote, vidé une secon<strong>de</strong> fois, et rempli du mélange<br />

N 2 /H 2 /CO 2 (90/5/5).<br />

Dans l’enceinte, les milieux sont réduits par addition <strong>de</strong> 20 mL. L -1 <strong>de</strong> Na 2 S à 2,5% (w/v), soit<br />

une concentration finale <strong>de</strong> 5 mg. L -1 .<br />

2.2.3 Les expériences <strong>de</strong> cultures d’enrichissement réalisées en fiole pénicilline (batch)<br />

Les cultures en flacon ont été réalisées dans <strong>de</strong>s conditions analogues à celles <strong>de</strong>s<br />

cultures en fermenteur gas-lift en terme d’inoculum, <strong>de</strong> milieu, <strong>de</strong> pH et <strong>de</strong> température.<br />

Ainsi, les cultures ont été réalisées en flacon pénicilline <strong>de</strong> 100 mL contenant 80 mL <strong>de</strong><br />

milieu "F1". A la différence du milieu préparé pour la culture en bioréacteur, ces milieux<br />

contiennent 10 g. L -1 <strong>de</strong> soufre "fleur" ainsi que 6,05 g. L -1 <strong>de</strong> PIPES afin <strong>de</strong> tamponner le<br />

milieu. Les milieux ont été inoculés à hauteur <strong>de</strong> 2% avec l’échantillon <strong>de</strong> cheminée<br />

AT2E1-8. Les cultures ont été incubées en anaérobiose, à pH 6,5, à 60°C et à 90°C. Ces<br />

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