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THESE Anne POSTEC Diversité de populations microbiennes ...

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Matériel et métho<strong>de</strong>s<br />

Tableau 8 : Composition du milieu GYPS-pH6.<br />

Composants<br />

Concentrations<br />

glucose 5 g. L -1<br />

extrait <strong>de</strong> levure 0,5 g. L -1<br />

peptone 1 g. L -1<br />

Sea Salts 30 g. L -1<br />

tampon MES 3,9 g. L -1<br />

La croissance <strong>de</strong> la souche a été estimée par comptage en cellule <strong>de</strong> Thoma, ou par<br />

mesure <strong>de</strong> la <strong>de</strong>nsité optique. Dans ce cas, la concentration cellulaire a été déterminée<br />

indirectement par la turbidité du milieu due à la croissance cellulaire. L’absorbance à 600 nm<br />

a été mesurée grâce à un spectrophotomètre (Spectronic 401, Milton Roy). Les cultures en<br />

tubes <strong>de</strong> Hungate sur milieu GYPS sans soufre permettent une lecture directe <strong>de</strong><br />

l’absorbance par insertion <strong>de</strong>s tubes dans le spectrophotomètre, après homogénéisation. La<br />

proportionnalité entre l’absorbance à 600 nm et la concentration cellulaire n’est valable que<br />

pour une gamme <strong>de</strong> concentrations cellulaires à définir. Une corrélation a été établie entre<br />

l’absorbance à 600 nm et le dénombrement cellulaire par comptage en cellule <strong>de</strong> Thoma.<br />

Bien que la technique <strong>de</strong> comptage en cellule <strong>de</strong> Thoma puisse être utilisée en théorie sur<br />

une gamme plus large <strong>de</strong> concentrations cellulaires (à partir <strong>de</strong> 10 6 cellules. mL -1 , sans limite<br />

supérieure), la technique <strong>de</strong> lecture <strong>de</strong> l’absorbance sera préférée lorsque <strong>de</strong> nombreuses<br />

mesures <strong>de</strong> concentration cellulaire sont nécessaires à l’expérimentation.<br />

4.2 Caractérisation morphologique <strong>de</strong> l’isolat<br />

4.2.1 Microscopie optique<br />

La morphologie, le mo<strong>de</strong> <strong>de</strong> division et la mobilité <strong>de</strong>s cellules ont été déterminés par<br />

<strong>de</strong>s observations au microscope à contraste <strong>de</strong> phase Olympus BX60, aux grossissements<br />

X400 et X1000. L’observation <strong>de</strong>s cellules dans <strong>de</strong>s milieux contenant <strong>de</strong>s substrats<br />

complexes (e.g. polysacchari<strong>de</strong>s), du soufre ou <strong>de</strong>s précipités minéraux est facilitée par un<br />

marquage spécifique <strong>de</strong>s cellules au DAPI et une observation en épifluorescence (voir<br />

2.4.2).<br />

4.2.2 Détermination du Gram<br />

Les cellules fixées sont colorées au cristal violet et à l’io<strong>de</strong>, puis traitées à l’alcool.<br />

Les cellules à Gram positif (peptidoglycane très épais) conservent une couleur violette après<br />

ce traitement. Les cellules à Gram négatif (peptidoglycane fin, espace périplasmique et<br />

membrane externe) sont décolorées par l’alcool et apparaissent roses après une contre-<br />

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