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Untersuchungen von Varianten des Polyomavirus-Hüllproteins VP1 im

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86<br />

a<br />

Absorption[mAU]<br />

b<br />

1.0<br />

0.8<br />

0.6<br />

0.4<br />

0.2<br />

0.0<br />

<strong>VP1</strong><br />

freier Farbstoff<br />

<strong>VP1</strong><br />

trunkiertes <strong>VP1</strong><br />

280 nm<br />

492 nm<br />

- 5 15 60 90<br />

0 2 4 6 8 10 12 14 16<br />

Volumen [ml]<br />

Abbildung 34. Freie SH-Gruppen <strong>im</strong> assemblierten <strong>VP1</strong>-2C-Kapsid. (a) Verlauf der<br />

Markierungsreaktion über 90 min, auf allen Bahnen wurde dieselbe Proteinmenge aufgetragen.<br />

(b) HPLC-Gelfiltration mit max<strong>im</strong>al markierten <strong>VP1</strong>-2C-Kapsiden.<br />

3.3 Ortsspezifische Fluoreszenzmarkierung polyomavirusanaloger Partikel<br />

Für eine Analyse der Aufnahme polyomavirusanaloger Partikel und ihres intrazellulären<br />

Targeting wurde versucht, die Partikel mit einem Fluoreszenzfarbstoff zu markieren.<br />

Fluoreszenzmarkierungen haben den Vorteil, dass die Exper<strong>im</strong>ente mit lebenden Zellen<br />

durchgeführt werden können. Außerdem sind Fluoreszenztechniken sehr sicher und<br />

relativ kostengünstig <strong>im</strong> Vergleich zu radioaktiven Markierungen und<br />

Elektronenmikroskopie (Bartlett & Samulski, 1998). Im Gegensatz zu bislang<br />

angewendeten Methoden zur relativ unspezifischen Markierung <strong>von</strong> Virusoberflächen<br />

an Aminogruppen (Leopold et al., 1998), sollte hier versucht werden, eine<br />

ortsspezifische Fluoreszenzmarkierung an definierten Cysteinresten einzuführen.<br />

Dadurch konnte ausgeschlossen werden, dass die relativ großen, hydrophoben<br />

Fluoreszenz Coomassie

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