Archivserver der Deutschen Nationalbibliothek
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Target ein sehr kleines Signal nachweisbar war. Das Signal unterschied sich vom<br />
Grundrauschen allerdings nur geringfügig.<br />
Der Vergleich von komplementären und nicht komplementären Dabcyl-markierten<br />
Targets erfolgte durch den Einsatz von 2 Sonden mit verschiedenen Sequenzen und<br />
einem Target. Die Untersuchung wuren nach einer 10 minütigen Hybridisierung in<br />
800 nM Target bei <strong>der</strong> komplementären Sonde und 30 min Hybridisierung bei <strong>der</strong><br />
nichtkomplementären Sonde durchgeführt. Die Oberflächenbelegung wurde vorher<br />
mittels Chronocoulometrie überprüft. Dabei konnte festgestellt werden das sich die<br />
beiden Sonden in diesem Punkt nicht voneinan<strong>der</strong> unterschieden.<br />
Abb. 5.32: Einfluß von komplementären und nichtkomplementären Nukleinsäuren auf<br />
Signal. Messungen bei Raumtemperatur in TRIS-Puffer pH 7,5. Grundlinie <strong>der</strong><br />
FRIZ-Sonde (a), 15 min Hybridisierung mit 0,8 µM komplementären Dabcyl-<br />
Target (b), Grundlinie <strong>der</strong> EcoR-Sonde (c), 30 min Hybridisierung von EcoR mit<br />
0,8 µM Dabcyl-Target (d)<br />
In <strong>der</strong> Abbildung 5.31 sind die Grundlinie, dass heißt das Signal in reinen 10 mM<br />
TRIS Puffer mit 0,5 M Natriumsulfat pH 7,5, <strong>der</strong> komplementären Sonde (a), das<br />
Hybridisierungssignal <strong>der</strong> komplementäre Sonde mit 800 nM Dabcyltarget nach<br />
15 min (b), die Grundlinie für die nichtkomplementäre Sonde (c) und das Signal<br />
nach 30 min Hybridisierung für das nichtkomplementäre Nukleinsäurepaar (d) dargestellt.<br />
Diese Versuche zeigen, dass sowohl die direkt heizbare Drahtelektrode, als auch die<br />
verwendeten Sonden und Targets für einen selektiven Nachweis <strong>der</strong> komplementären<br />
Nukleinsäuren geeignet sind.<br />
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