2. Material und Methoden - ArchiMeD
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102 Bp<br />
1/5<br />
1/10<br />
1/50<br />
1/100<br />
1/200<br />
M1<br />
H 2 O<br />
(A) Optimierung der Ditag PCR<br />
Linker<br />
~40 Bp<br />
Linker<br />
Ditag<br />
125<br />
100<br />
(A) Ditag PCR im großen Maßstab<br />
102 Bp<br />
(B) Isolierung von Ditags (C) Konkatemerisierung von Ditags<br />
50<br />
Bp<br />
ERGEBNISSE<br />
Abb. 35: “SYBR-Green”-gefärbte Polyacrylamid-Gele [Bei (A) <strong>und</strong> (B) 12%, bei (C) 8%] mit Beispielen<br />
verschiedener Schritte der SAGE-Methode.<br />
(A) Jeweils 1 µl unterschiedlicher Verdünnungen (1/5, 1/10, 1/50, 1/100, 1/200) der ligierten „Tags“ dienten als<br />
Matrize zur Amplifikation der „Ditags“ (28 Zyklen). Deutlich ist neben mehreren Hintergr<strong>und</strong>-Banden, eine<br />
102 Bp-Bande, die den amplifizierten „Ditags“ entspricht, zu erkennen. Nach Optimierung der PCR-<br />
Bedingungen wurde von der 1/50 Verdünnung die „Ditag“-PCR im 96-Lochformat durchgeführt. Die PCR-<br />
Produkte wurden vereinigt, gefällt <strong>und</strong> auf einem präparativen Gel aufgetrennt. Die 102 Bp-Bande wurde<br />
ausgeschnitten <strong>und</strong> aufgereinigt.<br />
(B) Nach Restriktion mit NlaIII zum Abtrennen der Linker-Anteile, wurde der Ansatz gelelektrophoretisch<br />
aufgetrennt <strong>und</strong> die 22-26 Bp große „Ditag“-Bande ausgeschnitten <strong>und</strong> aufgereinigt.<br />
(C) Die isolierten „Ditag“ wurden konkatemerisiert <strong>und</strong> gelelektrophoretisch aufgetrennt.Es wurden drei<br />
Bereiche unterschiedlicher Größe aus dem Gel ausgeschnitten, aufgereinigt <strong>und</strong> in pZero-Vektor kloniert.<br />
M1 25 Bp-Leiter, M2 20 Bp-Leiter, M3 100 Bp-Leiter.<br />
M1<br />
Linker Ditag Linker<br />
~40 Bp<br />
Ditag<br />
~22 Bp<br />
~ 22 Bp<br />
Linker<br />
~ 40 Bp<br />
~ 40 Bp<br />
M2 M3<br />
Fraktion 1<br />
Fraktion 2<br />
Fraktion 3<br />
Ditag Ditag Ditag Ditag<br />
107