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Pyruvat-Produktion durch acetatauxotrophe - JUWEL ...

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MATERIAL UND METHODEN 27<br />

mit Chloramphenicol (20 ~tg/ml) bei 43°C ausplattiert . Da pK03 und seine Derivate bei 43°C<br />

in E. coli nicht repliziert werden, sollte in chloramphenicolresistenten Klonen das Plasmid<br />

über homologe Rekombination im Bereich des Deletionskonstrukts in das Chromosom<br />

integriert worden sein . Um auf ein zweites Rekombinationsereignis zu selektionieren, wurden<br />

chloramphenicolresistente Klone in je 1 ml LB-Medium aufgenommen und sofort auf LB-<br />

Medium mit 5 % (w/v) Saccharose ausplattiert und bei 30°C inkubiert . In Anwesenheit von<br />

Levansucrase, dem Produkt des sacB-Gens von pK03, sind 5 % Saccharose letal für E. coli .<br />

Deshalb sollte bei saccharoseresistenten Klonen das Plasmid <strong>durch</strong> ein zweites<br />

Rekombinationsereignis aus dem Chromosom entfernt worden sein, wobei entweder der<br />

Wildtyp wiederhergestellt oder die gewünschte Deletion erzeugt wird .<br />

6 .9 Plvir-Phagentransduktion<br />

Zur Plvir-Phagentransduktion wurde ein Protokoll von Silhavy et al. (1984) modifiziert .<br />

6 .9 .1 Herstellung des Phagenlysates<br />

Der Donor-Stamm wurde in 5 ml LB mit 0,2 % (w/v) Glucose und 5 mM CaC1 2 bis zu einer<br />

OD600 von -1 bei 37°C kultiviert. 1/100 der Vorkultur wurde in 5 ml LB mit 0,2 % (w/v)<br />

Glucose und 5 mM CaC12 inokuliert und bis zu einer OD600 von -0,4 bei 37°C und<br />

170 U .p.m . inkubiert . Anschließend wurde entweder ein einzelner Phagenplaque oder 100 ~tl<br />

des Plvir-Lysates (>5 x 10 8 Phagen/ml) zugesetzt und etwa zwei Stunden bei 37°C inkubiert,<br />

bis die Zellen vollständig lysiert waren . Zum Abstoppen der Lyse wurden 100 ~t1 Chloroform<br />

zugefügt, der Ansatz gut gemischt und 10 min bei 4500 g zentrifugiert . Der das Phagenlysat<br />

enthaltende wässrige Überstand wurde sterilfiltriert und konnte bei 4°C gelagert werden .<br />

6 .9 .2 Bestimmung des Phagentiters<br />

Der Empfänger-Stamm wurde in 5 ml LB mit 0,2 % (w/v) Glucose und 5 mM CaC12 bis zu<br />

einer OD600 von -0,5 - 1 bei 37°C kultiviert und anschließend 10 min bei 1500 g sedimentiert .<br />

Das Pellet wurde in 1 ml 0,1 M MgS04/5 mM CaC12 resuspendiert . Jeweils 50 ~t1<br />

Zellsuspension wurde mit 50 ~tl verdünntem Phagenlysat (10 -2-10-10) gemischt und 5 min bei<br />

Raumtemperatur inkubiert. Anschließend wurde 300 ~tl geschmolzener, auf 50°C abgekühlter<br />

R-Top-Agar (10 g/1 Trypton, 1 g/1 Hefeextrakt, 8 g/1 NaCI, 2 mM CaC12, 1 g/1 Glucose, 8 g/1<br />

Agar) hinzugefügt, gemischt und sofort auf R-Platten (wie R-Top-Agar, aber mit 15 g/1 Agar)

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