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Pyruvat-Produktion durch acetatauxotrophe - JUWEL ...

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32 MATERIAL UNDMETHODEN<br />

Proteinlösung wurden die Ansätze 30 min bei 37°C inkubiert und vor der Messung der<br />

Extinktion bei 562 nm 10 Minuten auf Raumtemperatur abgekühlt .<br />

7 .4 Polyacrylamid-Gelelektrophorese von Proteinen<br />

7 .4 .1 Zweidimensionale Gelelektrophorese von Proteinen<br />

Bei der zweidimensionalen Gelelektrophorese (2D-Elektrophorese) werden<br />

Proteingemische zunächst <strong>durch</strong> eine isoelektrische Fokussierung nach ihrem isoelektrischen<br />

Punkt (1 . Dimension) und anschließend <strong>durch</strong> SDS-PAGE nach ihrer Größe (2 . Dimension)<br />

aufgetrennt . Mit Ausnahme von Thioharnstoff (Sigma, Deisendorf) und des Proteinstandards<br />

(New England Biolabs, Schwalbach) wurden alle Reagenzien und Apparaturen für die 2D-<br />

Elektrophorese von Amersham Pharmacia Biotech (Freiburg) bezogen . Vor der<br />

isoelektrischen Fokussierung in einem immobilisierten pH-Gradienten (IPG) wurden die<br />

Proteine solubilisiert. Dazu wurden 300 lag Protein vakuumgetrocknet und in 350 ~t1<br />

Solubilisierungspuffer (9 M Harnstoff, 2 M Thioharnstoff, 100 mM Dithiothreitol, 2 % (w/v)<br />

CHAPS, 1 % (v/v) Pharmalyte 3-10) gelöst . Die Proteinlösung wurde dann auf einem 18 cm<br />

langen IPG-Streifen verteilt, der den pH-Bereich von 4 bis 7 abdeckte . Die isoelektrische<br />

Fokussierung wurde in einem IPGphor-Gerät nach folgendem Programm <strong>durch</strong>geführt : 6 h<br />

30 V, 6 h 60 V, 1 h 200 V, 1 h 500 V, 1 h 2000 V, -10 h 8000 V (ergibt in der Summe<br />

80000 Voltstunden) . Nach der 1 . Dimension konnte der IPG-Streifen bis zur weiteren<br />

Verwendung bei -20°C gelagert werden .<br />

Der IPG-Streifen wurde nach der 1 . Dimension unter leichtem Schwenken zunächst 20 min<br />

in 10 ml Äquilibrierungslösung I (Äquilibrierungs-Stammlösung (50 mM Tris-HCl pH 6,8,<br />

6 M Harnstoff, 30 % (v/v) Glycerin, 4 % (w/v) SDS), 1 % (w/v) DTT, 50 pul BPB-Lösung<br />

(0,1 g Bromphenolblau/ml, 50 % (w/v) Saccharose) und anschließend 20 min in<br />

Äquilibrierungslösung II (Äquilibrierungs-Stammlösung, 4 % (w/v) Iodacetamid, 50 ~t1 BPB-<br />

Lösung) inkubiert. DTT und Iodacetamid wurden direkt vor der Anwendung zugesetzt .<br />

Die Auftrennung nach Größe erfolgte mit einem Fertiggel (ExcelGel SDS Gradient XL 12-<br />

14 %, Trennungsbereich ca. 5 bis 210 kDa) unter Verwendung des Horizontalgel-Systems<br />

Multiphor II . Zur Vorbereitung wurde die Kühlplatte dünn mit Cover-Fluid bedeckt und das<br />

Gel luftblasenfrei auf die Kühlplatte aufgelegt. Die ExcelGel°SDS-Pufferstreifen wurden<br />

ebenfalls luftblasenfrei am Anoden- bzw . Kathoden-Ende des Gels aufgelegt . Der IPG-<br />

Streifen wurde nach Äquilibrierung mit Lösung 11 kurz mit Wasser gespült, auf die Kathoden-

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