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FERNÁNDEZ-SÁNCHEZ R., TAMAYO-ORDOÑEZ, Y., AYIL-GUTIERREZ B., SÁNCHEZ-TEYER L.F., CORDOVA-QUIROZ A.V., TAMAYO-ORDOÑEZ F.A., TAMAYO-ORDOÑEZ, M.C. Algas D E.T. Algas D E.T. ATP – CL Ostreococcus tauri* 1 1 Chlamydomonas reindhartii a 3 1 Phaedactylum tricornutum c 1 5 Coccomyxa subellipsoidea c 1 2 Thaliassiosira pseudonana* 1 1 Cyanidioschyzon merolae a Guillardia theta a 2 3 1 4 Ostreococcus lucimarinus a 1 3 Chondrus crispus ab 2 1 Monoraphidium neglectum ab Volvox carteri a 3 1 3 6 Auxenochlorella protothecoides a 3 7 GPAT DGAT Chlorella variabilis a Chlamydomonas 2 4 reindhartii a 1 2 Thalassiosira Helicosporidium sp. pseudonana* 1 1 1 3 Volvox carteri f. Ettlia oleoabubdans nagariensis* 1 2 2 1 Chlamydomonas reindhartii a Galdiera sulphuraria* 2 3 3 1 Ostreococcus tauri * 1 2 Emiliania huxleyi* 3 1 Ostreococcus Auxenochlorella lucimarinus* 1 1 protothecoides* 3 1 Nannochloropsis gaditana a 2 5 Nannochloropsis gaditana* 3 1 Ostreococcu stauri* 3 1 Monoraphidium neglectum a 3 2 Nota: Cada número representa un valor arbitrario según la agrupación en el dendrograma(D) y según la conformación de la estructura terciaria (E.T.).* algas que se agrupan en el dendograma y presentan estructuras terciarias similares, a algas se agrupan en el dendograma, pero que presentan diferente estructura terciaria, b algas que presentan estructuras terciarias similares pero que muestran relación en el dendograma y c algas que no presentan agrupación en el dendograma y tampoco presentan estructuras terciarias similares. Mata T., Martins A. y Caetano N. 2010. Microalgae for biodiesel production and other applications: A review. Renewable and SustainableEnergyReview, 14: 217-232. Tamayo Ordoñez, Y., AyilGutierrez B., Sánchez Teyer, F., De la Cruz Arquijo, E., Tamayo Ordoñez, F., CordovaQuroz, A., Tamayo Ordoñez M. 2016. Advances in culture and genetic modification approaches to lipid biosynthesis for biofuel production and in silico analysis of enzymatic dominions in proteins related to lipidbiosynthesis in algae.Phycological Research. Vuttipongchaikij S. 2012. Genetic manipulation of microalgae for improvement of biodiesel production.Thai J. Genet, 5(2): 130- 148. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Bellou, S. y Aggelis, G. 2012. Biochemical activities in Chlorella sp.And Nannochloropsissalina during lipid and sugar synthesis in a lab-scale open pond simulating reactor.J. Biotechnol, 164: 318- 329. Bharath Kumar R., Jagadish D. y Manoj Kumar E. 2014. A note on algae as potential source for alternate fuels Biodiesel. International Journal of PharmTech Research, 6(6): 1783-1793. Breuer, G., Lammers PP., Martens D.E., Draaisma RB.yWijffels RH. 2014. Effect of light intensity, pH, and temperature on triacylglycerol (TAG) accumulation induced by nitrogen starvation in Scenedesmus obliquus. BioresourTechnol, 143: 1-9 Fernández Linares L., Montiel Montoya J., Millán Oropeza A. y Badillo Corona J. 2012. Producción de biocombustibles a partir de microalgas. Ra Ximhai, 8(3): 101-115. Garibay Hernández A., Vázquez-Duhalt R., Sánchez Saavedra M., Serrano Carreón L. y Martínez Jiménez A. 2009. Biodiesel a Partir de Microalgas. BioTecnología, 13(3): 31-68. Griffiths, M. y Harrison, S. 2009. Lipid productivity as a key characteristic for choosing algal species for biodiesel production.J. Appl. Phycol, 21: 493-507. Lei A., Chen H., Shen G., Hu Z., Chen L. y Wang J. 2012.Expression of fatty acid synthesis genes and fatty acid accumulation in Haematococcuspluvialisunder different stressors. Biotechnology for Biofuels, 18(5): 1-11. 138 REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO MÉRIDA Vol. 31 NÚM. 63
COMUNICACIÓN CORTA BIOTECNOLOGÍA AMBIENTAL REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO DE MÉRIDA. Vol. 31 NÚM. 63. PP. 139 – 140 OCT. 2016 ISSN 0185-6294 PAPEL DE LA PRODUCCIÓN DE ÁCIDO OXÁLICO EN LA INTERACCIÓN CON METALES EN LA CEPA Ed8 DE Aspergillus niger var. Tubingensis Carlos Ernesto Barajas Moreno a , Tonantzin Itzel Morales Vargas a , Pamela Romo Rodríguez a , Brenda Huerta Rosas b , Jesus Campos García c y J. Félix Gutiérrez Corona a . a Departamento de Biología y b Departamento de Ingeniería Química, DCNyE, Universidad de Guanajuato, Campus Guanajuato, Noria Alta s/n, C.P. 36000, Guanajuato, Gto, Mexico. c Instituto de Investigaciones Químico Biológicas, Universidad Michoacana de San Nicolas de Hidalgo Edificio B-1, planta baja Ciudad Universitaria, Francisco J. Múgica S/N, Colonia Felicitas del Río, Morelia, Michoacán, C.P. 58030 Autor de contacto: xilefgu@gmail.com Recibido: 30/agosto/2016 Aceptado: 29/septiembre/2016 Publicado: 19/octubre/2016 Palabras clave: Aspergillus tubingensis Ed8; Ácido oxálico; biolixiviación. INTRODUCCIÓN Los compuestos de cromo pueden encontrarse como contaminantes presentes en agua, suelo y residuos industriales. Las formas del cromo estables en el ambiente son el Cr(VI) y el Cr(III); el Cr(VI) es la forma más toxica debido a su alta solubilidad y a que es transportado activamente a través de la membrana plasmática de diferentes organismos, provocando estrés oxidativo dentro de las células; el Cr(III) es altamente insoluble y es menos tóxico que el Cr(VI) (1). La cepa ambiental Ed8 identificada como Aspergillus tubingensis posee la capacidad de reducir el Cr(VI) en Cr(III) en el medio extracelular; la velocidad de disminución del ion en el medio por la cepa Ed8 se incrementa en presencia de ácidos orgánicos como el citrato (2). En un estudio previo se observó que la alteración del gen codificante de la enzima oxaloacetato hidrolasa (OAH) disminuye drásticamente la producción de ácido oxálico, tanto en ausencia como en presencia de citrato (3). Se ha propuesto que la participación de los microorganismos en la lixiviación o la precipitación de metales, por la disolución de minerales, ocurre a través de la producción de ácidos orgánicos (4). El objetivo del presente trabajo es analizar el papel de la producción de ácido oxálico en la reducción de Cr(VI) a Cr(III) en cultivos y en la lixiviación de manganeso y plata a partir de un residuo minero que contiene dichos metales. MATERIAL Y MÉTODOS Los microorganismos empleados en este estudio fueron la cepa ambiental Aspergillus tubingensis Ed8, y las mutantes nulas Δoah IT4-9 e IT5-13 derivadas de Ed8 incapaces de producir acido oxálico, el cual en la cepa silvestre Ed8 es excretado al medio extracelular. Se realizaron ensayos de reducción de Cr(VI) en las distintas cepas siguiendo la metodología descrita anteriormente (2). Además, se realizaron ensayos de tolerancia a Cr(VI), Al(III) y Ag(I). Por último, se realizaron ensayos de biolixiviacion de Ag(I) y Mn(II) en un relave minero. La determinación de la concentración de plata y manganeso solubilizados del relave minero al sobrenadante de las mezclas de incubación se realizó mediante espectroscopia de absorción atómica (AAS). La formación de cristales que contienen manganeso o plata en las incubaciones con la cepa Ed8 y las mutantes Δoah se verificó mediante microscopía electrónica de barrido acoplada a una sonda de dispersión de rayos X (SEM-EDX). RESULTADOS Y DISCUSIÓN Se realizaron ensayos de disminución de Cr(VI) (sin y con citrato y sin y con Mn(II)) con las cepas Ed8 y las mutantes Δoah; los resultados indicaron que dichas cepas disminuyeron con menor eficiencia los niveles de Cr(VI), en comparación con la cepa Ed8, sobre todo en medio con citrato. También, se observó que en la cepa Ed8, el Mn(II) actúa como estimulador de la reducción de Cr(VI) a Cr(III) por la cepa Ed8 y que dicho efecto es menor en las mutantes Δoah IT4-9 e IT5-13. En los ensayos de tolerancia a metales, la cepa Ed8 mostró una mayor tolerancia a plata, aluminio y cromo en comparación con las cepas oah, en los medios probados. En los ensayos de biolixiviación de Mn(II) y Ag(I), a partir de un relave minero, se observó que a tiempos cortos la cepa Ed8 causa una mayor lixiviación de Mn que las mutantes Δoah y que en periodos largos de incubación ocurre un decremento abrupto en la capacidad de lixiviación de Mn y Ag en las incubaciones de la cepa Ed8, pero no en las de las mutantes Δoah (Fig. 1). Se propone que esta aparente caída en la capacidad de lixiviación de la cepa Ed8 se debe a la precipitación de Mn y Ag por el ácido oxálico producido por ésta; mediante la metodología SEM-EDX se verificó la presencia de mayor cantidad de cristales de Mn o plata en las incubaciones con la cepa Ed8, en comparación con las mutantes Δoah. Figura 1. Cinéticas de lixiviación de Mn (A) y Ag (B) por las cepas Ed8 y las mutantes oah IT4-9 e IT5-13. T E C N O L Ó G I C O N A C I O N A L D E M É X I C O . I. T. M É R I D A
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