RCGI V31 N63
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
ANÁLISIS HISTOLÓGICO DEL PROCESO MORFOGÉNICO DE BIXA ORELLANA<br />
de brotes de Bixa orellana. Cada semana se fue realizando un<br />
monitoreo y así como selección del material para procesar<br />
mediante el análisis histológico.<br />
Análisis histológico<br />
Fijación<br />
Primeramente, se colocan las muestras en viales con una<br />
Solución fijadora de F.A.A (etanol 500 mL, ácido acético<br />
glacial 50 mL, formaldehido 100 mL, agua destilada 350<br />
mL). Se infiltra al vacío por 2 días.<br />
Deshidratación<br />
Se realizan lavados con agua destilada estéril dos veces cada<br />
30 minutos, seguidamente se continua con lavados con<br />
concentraciones graduales de etanol (C 2 H 6 O) de 30%,50%<br />
70%,85% y 100% y etanol absoluto. Se infiltra las muestras<br />
con etanol al 70% por dos días, después se continúa con la<br />
concentración de 85% de etanol, etanol al 100% y con etanol<br />
absoluto (CH 3 CH 2 OH).<br />
Inclusión resina<br />
Después de haber sometido las muestras por el proceso de<br />
deshidratación se colocaron en una solución de etanol<br />
absoluto+ resina (Solución JB-4 A Monomer) de JB-4<br />
EMBEDDING KIT relación [1:1]. Posteriormente se<br />
colocaron en la solución JB-4 A Monomer+ Benzoyl<br />
peróxido pasticized (catalyst). Para cada 25 mL de solución.<br />
Se adiciono 1.2 g de catalyst (1.6 mL solución B) para montar<br />
el bloque, que polimeriza el bloque. Se tomó 2 mL de<br />
solución para el montaje de la muestra. Para los cortes<br />
histológicos se utilizó un micrótomo de rotación modelo<br />
Microm HM325.Los cortes histológicos fueron teñidos con<br />
Azul de toluidina, finalmente las muestras quedaron listas<br />
para ser analizadas en in microscopio óptico para la<br />
interpretación de los datos. En la toma de fotografías se usó<br />
un microscopio de Epifluorescencia. AXIOSCOPE A1.<br />
desarrollo de los centros meristemáticos, células que poseen<br />
un citoplasma denso y volumen reducido comparado con las<br />
vacuolas adyacentes Ferreira Da Cruz et al., 2014 (2-C), a su<br />
vez en la figura (2-D) existió una proliferación de las<br />
regiones meristemáticas, que dan lugar a las primeras<br />
estructuras nodulares, la otra micrografía (2-E) muestra el<br />
desarrollo de los haces vasculares de los nuevos vástagos que<br />
se formaron. De esta manera se visualiza que el proceso de<br />
regeneración es de tipo asincrónico por que los nódulos se<br />
forman en diferentes tiempos. En la sección (2-F) las<br />
estructuras del corte transversal se observa la formación de<br />
brotes en diferentes planos del callo a la semana tres de<br />
inducción de brotes.<br />
Figura 1. Cortes histológicos en explantes de hipocótilo de Bixa orellana.:<br />
Azul de toluidina. A) tejido de hipocótilo, A-F Control negativo, B-C: 1<br />
semana de inducción de brotes D) corte transversal del tejido de hipocótilo.<br />
G) sección longitudinal del explante semana 1. H-I: estructuras en<br />
formación, desarrollo de los haces vasculares, e: epidermis x: xilema, fl:<br />
floema hv: haces vasculares.<br />
RESULTADOS Y DISCUSION<br />
En el laboratorio, el proceso de inducción de brotes se logra<br />
con el empleo de BA a una concentración de 4.4 µM que<br />
origina brotes a partir de hipocótilo de Bixa orellana, el<br />
proceso de desdiferenciación ocurre en la sección donde se<br />
realizó el daño mecánico en la primera semana de inducción<br />
Figura 1 (B-C), que respecto al control las células se<br />
observan normales en el tejido; solo se observa la epidermis<br />
y el has vascular del tejido figura 1 (A). La figura D muestra<br />
la sección trasversal de la primera semana de inducción. Para<br />
la semana 2 se logró visualizar en el tejido la formación de<br />
los haces vasculares de los nuevos brotes que se conforman<br />
al tejido madre figura 1 (H-I).<br />
A la segunda semana de inducción en el análisis histológico<br />
se identificó la peridermis predispuesta para comenzar la<br />
formación de los haces vasculares y la formación de brotes<br />
en el explante figura 2 (A), la micrografía 2-(B) muestra la<br />
diferenciación de los haces vasculares al principio de su<br />
formación; al mismo tiempo el callo comienza con el<br />
Figura 2. Cortes histológicos en explantes de hipocótilo de Bixa orellana.:<br />
Azul de toluidina. A) Desarrollo de la peridermis en callos a las dos semanas<br />
de la formación de brotes, B) etapa temprana de la formación de haces<br />
vasculares semana 2, C) Formación de los centros meristemáticos a la<br />
semana tres de la inducción, D) desarrollo de las primeras estructuras, E)<br />
vascularización en diversas etapas, F) Desarrollo de las estructuras corte<br />
transversal. Semana tres de inducción de brotes.<br />
A la semana tres de la inducción de brotes se comienzan a<br />
desarrollar también los sitios meristemáticos, se logró<br />
visualizar el crecimiento de los haces vasculares en diferentes<br />
tiempos de desarrollo; dando como resultado la formación de<br />
los nuevos brotes al mismo tiempo el crecimiento de los<br />
mismos (3-A), en el corte longitudinal del callo se aprecia<br />
que los brotes se desarrollan al principio del sitio de corte (3-<br />
REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO MÉRIDA Vol. 31 NÚM. 63 63